| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 引言 | 第11-15页 |
| 第一章 加味黄芩汤对炎症性肠病大鼠肠组织IL-6/STAT3信号通路的调控 | 第15-32页 |
| 1. 实验材料 | 第15-16页 |
| ·动物 | 第15页 |
| ·药物 | 第15-16页 |
| ·主要试剂 | 第16页 |
| ·仪器 | 第16页 |
| 2. 实验方法 | 第16-21页 |
| ·动物造模 | 第16-17页 |
| ·动物分组与给药 | 第17页 |
| ·标本取材 | 第17页 |
| ·指标检测 | 第17-21页 |
| ·统计学处理 | 第21页 |
| 3. 结果与分析 | 第21-26页 |
| ·大鼠一般表现及结肠肉眼观察 | 第21-22页 |
| ·大鼠结肠组织HE染色病理表现 | 第22-23页 |
| ·加味黄芩汤对大鼠血清IL-6含量的影响 | 第23-24页 |
| ·加味黄芩汤对大鼠结肠组织MPO的影响 | 第24-25页 |
| ·加味黄芩汤对大鼠血清sIL-6Rα、gp130含量的影响 | 第25-26页 |
| ·加味黄芩汤对大鼠结肠组织STAT3、IL-6mRNA表达的影响 | 第26页 |
| 4. 讨论 | 第26-31页 |
| ·癌变是炎症性肠病的重要并发症 | 第26-28页 |
| ·IL-6/STAT3信号通路是炎症性肠病癌变的主要途径 | 第28-29页 |
| ·MPO与溃疡性结肠炎 | 第29-30页 |
| ·本实验结果 | 第30-31页 |
| 5 结论 | 第31-32页 |
| 第二章 加味黄芩汤抑制AOM/DSS诱导的小鼠炎症性肠病癌变机制研究 | 第32-42页 |
| 1. 实验材料 | 第32-33页 |
| ·动物 | 第32页 |
| ·药物 | 第32页 |
| ·主要试剂 | 第32页 |
| ·仪器 | 第32-33页 |
| 2. 实验方法 | 第33-34页 |
| ·造模方法 | 第33页 |
| ·动物分组 | 第33页 |
| ·治疗方法 | 第33页 |
| ·标本取材 | 第33页 |
| ·指标检测 | 第33-34页 |
| ·统计学处理 | 第34页 |
| 3. 结果与分析 | 第34-38页 |
| ·观察结肠炎相关结肠癌小鼠结肠大体标本 | 第34-35页 |
| ·结肠组织病理学观察 | 第35-37页 |
| ·检测细胞凋亡指数变化 | 第37页 |
| ·免疫组化检测MPO、TNF-α含量变化 | 第37-38页 |
| 4. 讨论 | 第38-41页 |
| ·黄芩汤的现代药理研究 | 第38-40页 |
| ·“既病防变”治疗方法能够控制炎症性肠病发生癌变 | 第40页 |
| ·本实验结果 | 第40-41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 第三章 加味黄芩汤对肿瘤细胞的体内外抑制作用研究 | 第42-56页 |
| 1. 实验材料 | 第42-43页 |
| ·动物 | 第42页 |
| ·药物 | 第42页 |
| ·肿瘤细胞株 | 第42页 |
| ·试剂 | 第42-43页 |
| ·仪器 | 第43页 |
| 2. 实验方法 | 第43-44页 |
| ·荷瘤小鼠模型建立与分组 | 第43页 |
| ·体内抑瘤作用观察 | 第43页 |
| ·T淋巴细胞增殖试验 | 第43-44页 |
| ·对小鼠结肠癌细胞株CoCon-26体外抑制增殖的作用 | 第44页 |
| ·统计学处理 | 第44页 |
| 3. 结果与分析 | 第44-47页 |
| ·加味黄芩汤对荷瘤小鼠体内抑瘤作用观察 | 第44-46页 |
| ·加味黄芩汤对荷瘤小鼠T淋巴细胞增殖作用观察 | 第46页 |
| ·加味黄芩汤抑制小鼠结肠癌细胞株CoCon-26体外增殖的作用 | 第46-47页 |
| 4. 讨论 | 第47-55页 |
| ·肿瘤形成的内因 | 第47-49页 |
| ·肿瘤形成的外因 | 第49-51页 |
| ·黄芩汤药理作用 | 第51-52页 |
| ·马齿苋药理作用 | 第52-53页 |
| ·中药马齿苋具有显著的抗炎及抗肿瘤作用 | 第53-54页 |
| ·加味黄芩汤的组方及抗肿瘤作用 | 第54-55页 |
| ·本实验结果 | 第55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 主要创新点 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 文献综述 | 第63-85页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果目录 | 第85-86页 |
