| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 縮略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-37页 |
| ·Tudor-SN蛋白的结构特征及功能研究进展 | 第11-19页 |
| ·结构特征 | 第11-12页 |
| ·Tudor-SN蛋白在动物中的功能研究 | 第12-17页 |
| ·Tudor-SN蛋白在植物中的功能研究 | 第17-19页 |
| ·GA的研究进展 | 第19-27页 |
| ·GA的生物合成 | 第19-20页 |
| ·GA的信号转导 | 第20页 |
| ·GA与逆境忍耐的关系 | 第20-23页 |
| ·GA应对非生物逆境的机制研究 | 第23-26页 |
| ·拟南芥GA合成酶基因GA20ox的表达和调控 | 第26-27页 |
| ·SGs的研究进展 | 第27-33页 |
| ·SGs的发现 | 第27页 |
| ·SGs的形成条件 | 第27页 |
| ·SGs的组成及动力学平衡 | 第27-28页 |
| ·SGs的聚合 | 第28-30页 |
| ·影响SGs的聚合的因素 | 第30-32页 |
| ·SGs的解聚 | 第32页 |
| ·SGs的功能 | 第32-33页 |
| ·SGs与细胞凋亡的关系 | 第33页 |
| ·植物对盐逆境的响应 | 第33-35页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第35-37页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第37-54页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·植物材料 | 第37页 |
| ·宿主菌 | 第37页 |
| ·质粒载体 | 第37页 |
| ·各种酶及试剂 | 第37页 |
| ·主要仪器 | 第37-38页 |
| ·常用培养基及试剂的配制 | 第38-40页 |
| ·常用培养基的配制 | 第38-39页 |
| ·拟南芥原生质体转化试剂 | 第39页 |
| ·拟南芥幼苗总蛋白提取液 | 第39页 |
| ·RNA免疫共沉淀试剂配方 | 第39-40页 |
| ·其他常用试剂溶液配方 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-54页 |
| ·拟南芥培养 | 第40-41页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备和质粒转化 | 第41页 |
| ·农杆菌电击感受态细胞的制备和转化 | 第41-42页 |
| ·普通PCR扩增及载体构建的基本方法 | 第42页 |
| ·载体构建的基本方法 | 第42-43页 |
| ·SDS法提取植物基因组DNA | 第43-44页 |
| ·质粒DNA的提取方法 | 第44页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第44-46页 |
| ·mRNA的反转录实验 | 第46-47页 |
| ·半定量PCR及实时定量PCR | 第47页 |
| ·转基因植株的筛选及纯合株系的获得 | 第47-48页 |
| ·种子萌发实验 | 第48页 |
| ·开花及株高测量 | 第48页 |
| ·根长测量 | 第48-49页 |
| ·GA回复实验 | 第49页 |
| ·拟南芥原生质体瞬时表达实验 | 第49页 |
| ·虫草素(Cordycepin)处理幼苗实验 | 第49-50页 |
| ·甘氨酸SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第50-51页 |
| ·蛋白质印迹(Western Blot)实验 | 第51-52页 |
| ·RNA免疫共沉淀实验 | 第52-54页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第54-91页 |
| ·TSN1和TSN2的氨基酸序列分析 | 第54页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi转基因植株的获得及表型分析 | 第54-63页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi载体的构建 | 第54-58页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi转基因植株的获得 | 第58页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi转基因植株中的基因表达分析 | 第58-60页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi转基因植株正常生长下的表型分析 | 第60-61页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi转基因植株在逆境下的表型分析 | 第61-63页 |
| ·TSN1过表达转基因植株的获得及表型分析 | 第63-70页 |
| ·TSN1过表达载体的构建 | 第63页 |
| ·TSN1过表达转基因植株的获得与基因表达分析 | 第63-64页 |
| ·TSN1过表达转基因植株在正常生长条件下的表型分析 | 第64-68页 |
| ·TSN1过表达转基因植株在逆境下的表型分析 | 第68-70页 |
| ·小结 | 第70页 |
| ·GA20ox3功能缺失突变体的获得及表型分析 | 第70-75页 |
| ·GA20ox3功能缺失突变体的获得 | 第70-72页 |
| ·ga20ox3突变体在正常条件下的表型分析 | 第72-73页 |
| ·ga20ox3突变体在逆境下的表型分析 | 第73-75页 |
| ·赤霉素回复TSN1/TSN2 RNAi株系和ga20ox3突变体在逆境下的表型分析 | 第75-76页 |
| ·小结 | 第76页 |
| ·GA20ox和TSN1在盐逆境下的基因表达分析 | 第76-77页 |
| ·TSN1的亚细胞定位及逆境下蛋白表达分析 | 第77-79页 |
| ·TSN1的亚细胞定位 | 第77-78页 |
| ·盐逆境下TSN1的蛋白表达分析 | 第78-79页 |
| ·小结 | 第79页 |
| ·TSN1与SGs的关系分析 | 第79-87页 |
| ·TSN1-GFP与RFP-RBP47融合蛋白在原生质体中的定位分析 | 第79-82页 |
| ·TSN1/TSN2 RNAi原生质体中RFP-RBP47的定位分析 | 第82-84页 |
| ·TSN1定位于SGs的功能域分析 | 第84-86页 |
| ·小结 | 第86-87页 |
| ·TSN1调节GA20ox3 mRNA的机制分析 | 第87-91页 |
| ·TSN1结合GA20ox3 mRNA的分析 | 第87-89页 |
| ·TSN1调节GA20ox3 mRNA的稳定性分析 | 第89-90页 |
| ·小结 | 第90-91页 |
| 第四章 讨论 | 第91-95页 |
| ·TSN通过调节GA20ox3进而调节植物在逆境下的生长 | 第91-92页 |
| ·GA20ox3是维持逆境下植物生长所必需的 | 第92页 |
| ·作为SGs的一个组成成分,TSN可能是盐逆境下GA20ox3的最适量翻译所必需的 | 第92-94页 |
| ·Tudor域可能是TSN1参与SGs形成的次级聚合所必需的 | 第94-95页 |
| 第五章 结论 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 作者简历 | 第114页 |
