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补肾活血法促进TGF-β2基因修饰的ADSCs向软骨细胞分化的作用和机制的实验研究

中文摘要第1-9页
Abstract第9-11页
缩略词表第11-12页
文献综述第12-17页
 1 中药含药血清干预间充质干细胞增殖第12-13页
 2 中药含药血清干预间充质干细胞分化第13-15页
 3 存在的问题、前景和展望第15-17页
前言第17-19页
第一部分 SD大鼠脂肪来源干细胞的分离、培养、鉴定中文摘要第19-39页
 中文摘要第19-20页
 材料与方法第20-28页
  1 实验动物第20页
  2 主要仪器第20页
  3 主要试剂第20-21页
  4 主要试剂配制第21-23页
  5 SD大鼠ADSCs的分离、培养、传代、冻存、复苏第23-26页
  6 流式细胞仪鉴定细胞表型第26-28页
 实验结果第28-31页
  1 取材第28页
  2 ADSCs体外生长特征第28-29页
  3 ADSCs的冻存和复苏第29页
  4 第1、3、5、10代ADSCs生长曲线第29-30页
  5 ADSCs的表面标志鉴定结果第30-31页
 讨论第31-35页
  1 大鼠ADSCs的分离培养及生物学特性第31-32页
  2 ADSCs的增殖活性测定第32页
  3 ADSCs表面标记第32-35页
 结论一第35-36页
 附图(一)第36-39页
第二部分 ADSCs向同胚层及跨胚层细胞方向分化及鉴定中文摘要第39-63页
 中文摘要第39-40页
 材料与方法第40-52页
  1 实验动物第40页
  2 主要仪器第40页
  3 主要试剂第40-41页
  4 主要试剂配制第41-45页
  5 SD大鼠ADSCs的分离与传代培养第45页
  6 成脂肪诱导及鉴定第45-46页
  7 成骨诱导及鉴定第46-47页
  8 向软骨细胞诱导与鉴定第47-50页
  9 向神经元样细胞诱导与鉴定第50-52页
 实验结果第52-55页
  1 ADSCs的细胞形态第52页
  2 ADSCs成脂诱导分化和鉴定第52页
  3 ADSCs成骨诱导分化及鉴定第52-53页
  4 向软骨细胞诱导与鉴定第53页
  5 向神经元样细胞诱导与鉴定第53-55页
 讨论第55-56页
 结论二第56-57页
 附图(二)第57-63页
第三部分 补肾活血中药对脂肪干细胞生物学特性、基因转染及其向软骨细胞分化功能的影响中文摘要第63-82页
 中文摘要第63-64页
 材料与方法第64-71页
  1 实验动物第64页
  2 主要仪器第64页
  3 主要试剂第64页
  4 主要试剂配制第64-65页
  5 制备补肾活血中药水煎剂及其浓缩液第65页
  6 灌胃及提取血清第65-66页
  7 MTT法检测不同浓度补肾活血含药血清与去离子水含药血清对第三代ADSCs增殖的影响第66页
  8 真核表达载体pcDNA3.1(+)-hTGF beta2质粒的扩增和提取第66-67页
  9 脂质体转染法转染ADSCs第67页
  10 构建携带hTGF beta2基因的5型复制缺陷型病毒第67页
  11 携带hTGF beta2基因的复制缺陷型腺病毒转染ADSCs以确定转染复数第67页
  12 不同剂量浓度含药血清干预携带hTGF beta2基因的复制缺陷型腺病毒转染ADSCs并向软骨细胞方向诱导分化第67-68页
  13 携带hTGF beta2基因的复制缺陷型腺病毒转染ADSCs并向软骨细胞方向诱导分化第68-71页
 实验结果第71-78页
  1 备补肾活血中药水煎剂及其浓缩液第71页
  2 灌胃及制备含药血清第71页
  3 MTT法检测不同浓度补肾活血含药血清与去离子水含药血清对第三代ADSCs增殖的影响第71页
  4 脂质体转染法转染ADSCs第71-72页
  5 构建rAd5-hTGF-beta2复制缺陷型病毒并转染ADSCs第72页
  6 不同剂量浓度含药血清干预携带hTGF beta2基因的复制缺陷型腺病毒转染ADSCs并向软骨细胞方向诱导分化第72-73页
  7 携带hTGF beta2基因的复制缺陷型腺病毒转染ADSCs并向软骨细胞方向诱导分化第73-78页
 讨论第78-79页
 结论三第79-80页
 附图(三)第80-82页
第四部分 创新点第82-83页
参考文献第83-89页
致谢第89-90页
个人简历第90页

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