| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 引言 | 第12-20页 |
| ·CAT 研究现状与进展 | 第12-15页 |
| ·过氧化氢酶的结构特点和功能 | 第12-13页 |
| ·过氧化氢酶修饰电极的制备方法 | 第13-14页 |
| ·过氧化氢酶的研究进展 | 第14-15页 |
| ·人工酶的研究现状与进展 | 第15-17页 |
| ·人工酶的定义 | 第15页 |
| ·人工酶模型 | 第15-16页 |
| ·人工酶的研究现状 | 第16-17页 |
| ·氧化还原酶直接电化学生物传感器研究进展 | 第17-19页 |
| ·酶生物传感器的研究进展 | 第17页 |
| ·氧化还原酶直接电化学 | 第17-18页 |
| ·氧化还原酶的固定化 | 第18页 |
| ·电化学分析法 | 第18-19页 |
| ·本论文目的及研究思路 | 第19-20页 |
| 2 过氧化氢酶直接电化学 | 第20-30页 |
| ·实验部分 | 第21-22页 |
| ·仪器 | 第21页 |
| ·试剂 | 第21页 |
| ·试剂配制 | 第21-22页 |
| ·CAT-AuNPs 膜修饰电极制备 | 第22-23页 |
| ·实验结果与讨论 | 第23-28页 |
| ·循环伏安法测量 CAT 与修饰材料循环伏安曲线对比 | 第23-24页 |
| ·不同扫描速度下，过氧化氢酶电化学反应机制 | 第24-26页 |
| ·过氧化氢酶在不同 pH 缓冲溶液中循环伏安曲线对比 | 第26-27页 |
| ·过氧化氢酶催化不同浓度 H_2O_2及检测限值 | 第27-28页 |
| ·CAT 直接电化学不同修饰方法的参数值比较 | 第28页 |
| ·小结 | 第28-30页 |
| 3 脂质体结构过氧化物人工酶直接电化学研究 | 第30-38页 |
| ·实验部分 | 第31-32页 |
| ·仪器 | 第31页 |
| ·试剂 | 第31页 |
| ·人工酶的构建 | 第31-32页 |
| ·实验结果与讨论 | 第32-37页 |
| ·不同修饰玻碳电极的循环伏安曲线 | 第32页 |
| ·修饰电极不同扫描速率循环伏安图 | 第32-34页 |
| ·不同溶液 pH 对酶电极的影响 | 第34-35页 |
| ·电化学线性扫描测量人工酶对不同浓度 H_2O_2的检测 | 第35-37页 |
| ·不同修饰方法参数值比对 | 第37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 4 纳米胶团过氧化物人工酶直接电化学研究 | 第38-48页 |
| ·实验部分 | 第39-41页 |
| ·仪器 | 第39页 |
| ·试剂 | 第39页 |
| ·试剂配置 | 第39页 |
| ·细胞色素 c 三维结构图 | 第39-40页 |
| ·SDS+细胞色素 c 人工酶修饰电极示意图 | 第40-41页 |
| ·实验结果与讨论 | 第41-45页 |
| ·不同修饰材料循环伏安曲线对比 | 第41-42页 |
| ·电化学测量人工酶及各个修饰材料交流阻抗 | 第42-43页 |
| ·循环伏安法测量人工酶电化学反应机制 | 第43-44页 |
| ·溶液 pH 对修饰电极的影响 | 第44-45页 |
| ·酶修饰电极对不同浓度 H_2O_2的检测 | 第45页 |
| ·小结 | 第45-48页 |
| 5 结论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第62-63页 |
