| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 部分缩写的中英文对照 | 第15-16页 |
| 第一篇 文献综述 | 第16-44页 |
| 第一章 多糖生物活性的研究进展 | 第16-32页 |
| 1 多糖的概述 | 第16-17页 |
| ·真菌多糖 | 第16页 |
| ·细菌多糖 | 第16-17页 |
| ·动物多糖 | 第17页 |
| ·植物多糖 | 第17页 |
| 2 多糖生物活性的研究概况 | 第17-20页 |
| ·免疫调节作用 | 第17-18页 |
| ·抗氧化作用 | 第18-19页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第19页 |
| ·抗病毒作用 | 第19-20页 |
| 3 茯苓多糖的研究进展 | 第20-25页 |
| ·茯苓的概述及其生物活性 | 第20-21页 |
| ·茯苓多糖的提取 | 第21-22页 |
| ·茯等多糖的化学修饰及其生物活性 | 第22-25页 |
| 参考文献 | 第25-32页 |
| 第二章 猪圆环病毒2型的研究概述 | 第32-44页 |
| 1 PCV的病原特性 | 第32页 |
| 2 PCV2的相关性疾病及其病理变化 | 第32-35页 |
| ·断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS) | 第33-34页 |
| ·猪皮炎与肾病综合征(PDNS) | 第34页 |
| ·A2型先天性震颤(CT) | 第34页 |
| ·猪呼吸道病综合征(PRDC) | 第34-35页 |
| ·猪增生性和坏死性肺炎(PNP) | 第35页 |
| 3 PCV2的流行病学 | 第35-36页 |
| ·传染源与传播途径 | 第35页 |
| ·PCV2在我国的流行情况 | 第35-36页 |
| 4 PCV2免疫学研究进展 | 第36-37页 |
| 5 PCV2实验感染动物模型的研究进展 | 第37页 |
| 6 本实验研究的目的及意义 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 第二篇 试验部分 | 第44-130页 |
| 第三章 SP和CMP对PCV2感染仔猪脾细胞的增殖和分泌细胞因子的影响 | 第44-66页 |
| 摘要 | 第44-45页 |
| 1 材料与方法 | 第45-50页 |
| ·试验动物与药物 | 第45页 |
| ·病毒和细胞 | 第45页 |
| ·主要的仪器 | 第45页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第45-47页 |
| ·PCV2病毒增殖和毒价测定 | 第47-49页 |
| ·猪脾细胞的分离培养 | 第49页 |
| ·猪脾细胞体外增殖的测定 | 第49页 |
| ·猪脾T、B淋巴细胞体外增殖的测定 | 第49-50页 |
| ·猪脾细胞体外培养分泌细胞因子的测定 | 第50页 |
| ·数据统计与分析 | 第50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-62页 |
| ·PCV2病毒增殖和毒价测定结果 | 第50-52页 |
| ·猪脾细胞体外增殖的结果 | 第52页 |
| ·猪脾T淋巴细胞体外增殖的结果 | 第52-54页 |
| ·猪脾B淋巴细胞体外增殖的结果 | 第54-55页 |
| ·猪脾细胞体外培养分泌IL-1β的结果 | 第55-56页 |
| ·猪脾细胞体外培养分泌IL-8的结果 | 第56-58页 |
| ·猪脾细胞体外培养分泌IL-2、IL-10的结果 | 第58-60页 |
| ·猪脾细胞体外培养分泌TNF-α的影响 | 第60-62页 |
| 3 讨论 | 第62-63页 |
| ·SP和CMP对猪脾细胞体外增殖的影响 | 第62页 |
| ·SP和CMP对PCV2感染猪脾细胞分泌细胞因子的影响 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| Abstract | 第65-66页 |
| 第四章 SP和CMP对PCV2感染的猪肺泡巨噬细胞吞噬功能和活性的影响 | 第66-90页 |
| 摘要 | 第66-67页 |
| 1 材料与方法 | 第67-69页 |
| ·试验动物与多糖 | 第67页 |
| ·病毒 | 第67页 |
| ·主要的仪器 | 第67页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第67页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞的分离培养 | 第67-68页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养活性的实验 | 第68页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞吞噬功能的测定 | 第68页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养上清液NO含量的测定 | 第68页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌细胞因子的测定 | 第68-69页 |
| ·数据分析 | 第69页 |
| 2 结果与分析 | 第69-83页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养活性 | 第69-70页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞吞噬功能的测定结果 | 第70-73页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌NO的结果 | 第73-75页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌IL-1β的结果 | 第75-77页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌IL-8的结果 | 第77-78页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌的IL-10的结果 | 第78-80页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌TNF-α的结果 | 第80-81页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌MCP-1的结果 | 第81-83页 |
| 3 讨论 | 第83-86页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养的生长活性 | 第83页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养吞噬功能的变化 | 第83-84页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌NO的变化 | 第84页 |
| ·猪肺泡巨噬细胞体外培养分泌细胞因子的变化 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| Abstract | 第88-90页 |
| 第五章 SP和CMP对PCV2感染诱导猪脾细胞氧化应激的调节作用 | 第90-102页 |
| 摘要 | 第90-91页 |
| 1 材料与方法 | 第91-92页 |
| ·试验动物与多糖 | 第91页 |
| ·病毒 | 第91页 |
| ·主要的仪器 | 第91页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第91页 |
| ·猪脾细胞的分离培养 | 第91页 |
| ·猪脾细胞体外培养产生ROS的测定 | 第91-92页 |
| ·猪脾细胞体外培养上清液T-SOD和TAOC的测定 | 第92页 |
| ·数据分析 | 第92页 |
| 2 结果与分析 | 第92-99页 |
| ·猪脾细胞内ROS的测定结果 | 第92-94页 |
| ·猪脾细胞培养上清液T-SOD的测定结果 | 第94-96页 |
| ·猪脾细胞培养上清液TAOC的测定结果 | 第96-99页 |
| 3 讨论 | 第99页 |
| ·SP和CMP对猪脾细胞活性氧产生的影响 | 第99页 |
| ·SP和CMP对猪脾细胞抗氧化能力的影响 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-101页 |
| Abstract | 第101-102页 |
| 第六章 CMP对PCV2感染小鼠免疫功能调节的研究 | 第102-130页 |
| 摘要 | 第102-103页 |
| 1 材料与方法 | 第103-108页 |
| ·试验动物与多糖 | 第103页 |
| ·病毒 | 第103页 |
| ·主要的仪器 | 第103页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第103-104页 |
| ·PCV2实验感染昆明系小鼠模型的建立 | 第104页 |
| ·动物试验分组与处理 | 第104-105页 |
| ·小鼠临床症状和病理变化观察 | 第105页 |
| ·小鼠脾脏和胸腺指数测定 | 第105页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞体外增殖的测定 | 第105页 |
| ·小鼠脾脏、胸腺组织TAOC、T-SOD和GSH含量的测定 | 第105-106页 |
| ·血清中IL-2、INF-α、IL-6、IL-10含量的测定 | 第106页 |
| ·脾脏和胸腺组织IL-2和IL-10mRNA表达量的测定 | 第106-108页 |
| ·数据分析 | 第108页 |
| 2 结果与分析 | 第108-122页 |
| ·PCV2实验感染小鼠模型的建立 | 第108-110页 |
| ·小鼠的临床症状和病理变化 | 第110-112页 |
| ·小鼠脾脏和胸腺指数 | 第112页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞体外增殖 | 第112-113页 |
| ·小鼠脾脏、胸腺组织中TAOC、T-SOD | 第113-114页 |
| ·小鼠的脾脏、胸腺组织中GSH含量 | 第114-115页 |
| ·小鼠血清IL-2、INF-α、IL-6、IL-10含量 | 第115-117页 |
| ·小鼠脾脏和胸腺IL-2和IL-10mRNA相对表达变化 | 第117-122页 |
| 3 讨论 | 第122-125页 |
| ·PCV2感染昆明系小鼠模型的建立 | 第122-123页 |
| ·CMP对PCV2感染小鼠的脾脏和胸腺指数的影响 | 第123页 |
| ·CMP对PCV2感染小鼠脾淋巴细胞体外增殖活性的影响 | 第123页 |
| ·CMP对PCV2感染小鼠的脾脏和胸腺组织抗氧化能力的影响 | 第123-124页 |
| ·CMP对PCV2小鼠血清中细胞因子及其mRNA相对表达的影响 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-128页 |
| Abstract | 第128-130页 |
| 全文结论 | 第130-132页 |
| 本文创新点 | 第132-134页 |
| 致谢 | 第134-136页 |
| 论文发表情况 | 第136页 |
