| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 1． 前言 | 第8-20页 |
| 1．1 菝葜科的概况 | 第8页 |
| 1．2 草本菝葜组的研究状况及存在的问题 | 第8-14页 |
| 1．2．1 草本菝葜的形态性状研究 | 第9-11页 |
| 1．2．2 草本菝葜的孢粉学研究 | 第11-12页 |
| 1．2．3 草本菝葜的细胞学研究 | 第12页 |
| 1．2．4 草本菝葜的起源和进化的研究 | 第12-14页 |
| 1．3 系统进化研究的理论和方法及其进展 | 第14-19页 |
| 1．3．1 系统进化植物学研究方法的发展 | 第14-15页 |
| 1．3．2 形态性状研究的重要性 | 第15页 |
| 1．3．3 利用生物大分子进行系统进化研究的特点和意义 | 第15-19页 |
| 1．3．3．1 关于分子标记 | 第15-16页 |
| 1．3．3．2 核酸序列分析 | 第16-18页 |
| 1．3．3．3 DNA指纹分析 | 第18-19页 |
| 1．4 本研究的目的 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-30页 |
| 2．1 试剂、仪器及材料 | 第20-25页 |
| 2．1．1 试剂及其来源 | 第20页 |
| 2．1．2 主要仪器 | 第20页 |
| 2．1．3 材料及其来源 | 第20-25页 |
| 2．2 方法 | 第25-29页 |
| 2．2．1 形态性状研究 | 第25页 |
| 2．2．2 植物总DNA的提取 | 第25-26页 |
| 2．2．2．1 新鲜叶片采用CTAB法 | 第25-26页 |
| 2．2．2．2 干叶片采用QIAGEN试剂盒提取 | 第26页 |
| 2．2．3 序列测定 | 第26-28页 |
| 2．2．3．1 rDNA ITS和cpDNA rp116内含子的PCR扩增 | 第26-28页 |
| 2．2．3．2 产物纯化 | 第28页 |
| 2．2．3．3 序列测定 | 第28页 |
| 2．2．4 RAPD分析 | 第28-29页 |
| 2．2．4．1 反应体系组成的优化实验 | 第28页 |
| 2．2．4．2 反应条件的优化实验 | 第28页 |
| 2．2．4．3 引物的筛选 | 第28页 |
| 2．2．4．4 引物扩增 | 第28-29页 |
| 2．3 数据处理 | 第29-30页 |
| 2．3．1 形态性状数据处理 | 第29页 |
| 2．3．2 测序结果数据处理 | 第29页 |
| 2．3．3 RAPD分析数据处理 | 第29-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-53页 |
| 3．1 草本菝葜形态性状分析结果 | 第30页 |
| 3．2 草本菝葜及相关类群rp116内含子序列分析结果 | 第30-43页 |
| 3．3 草本菝葜ITS序列分析结果 | 第43页 |
| 3．4 草本菝葜RAPD分析结果 | 第43-53页 |
| 4 问题与讨论 | 第53-61页 |
| 4．1 关于研究方法的讨论 | 第53-56页 |
| 4．1．1 选择分子标记的标准 | 第53页 |
| 4．1．2 DNA序列的选择 | 第53页 |
| 4．1．3 核酸序列测定方法的选择 | 第53-54页 |
| 4．1．4 分子系统树的构建 | 第54页 |
| 4．1．5 外类群的选择 | 第54页 |
| 4．1．6 RAPD反应体系与反应条件优化的必要性 | 第54-56页 |
| 4．2 草本菝葜ITS测序未果原因分析 | 第56页 |
| 4．3 草本菝葜的系统发育 | 第56-61页 |
| 4．3．1 从形态性状分析草本菝葜组的种间关系 | 第56-57页 |
| 4．3．2 从RAPD和rp116内含子分析结果探讨草本菝葜的种间关系 | 第57-61页 |
| 5． 结论 | 第61-66页 |
| 英文摘要 | 第66页 |
