| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| ·MADS-box基因的概述 | 第11-12页 |
| ·MADS-box基因及其分布 | 第11页 |
| ·MADS-box基因的分类 | 第11页 |
| ·MADS盒蛋白转录因子 | 第11-12页 |
| ·MADS-box基因的重复及其功能的多样性 | 第12-16页 |
| ·MADS-box基因的重复 | 第12页 |
| ·AP1/SQUA-like亚家族 | 第12-13页 |
| ·AP3/PI-like(DEF/GLO)亚家族 | 第13-14页 |
| ·AG-like亚家族 | 第14-15页 |
| ·SEP-like亚家族 | 第15-16页 |
| ·MADS-box基因对植物花器官的发育调控 | 第16-19页 |
| ·ABC模型 | 第16页 |
| ·ABCE模型 | 第16-17页 |
| ·花器官发育基因以蛋白质复合体形式决定花器官的发育 | 第17-18页 |
| ·控制开花时间早晚 | 第18页 |
| ·MADS-box基因在胚珠发育中的作用 | 第18-19页 |
| ·AGL6亚家族基因研究进展 | 第19-21页 |
| 第二章 引言 | 第21-22页 |
| 第三章 材料与方法 | 第22-32页 |
| ·实验材料 | 第22-24页 |
| ·植物材料 | 第22页 |
| ·蜡梅花cDNA文库 | 第22页 |
| ·菌株与载体 | 第22页 |
| ·主要化学试剂 | 第22页 |
| ·主要仪器设备 | 第22页 |
| ·自配的主要试剂 | 第22-24页 |
| ·主要培养基配方 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-26页 |
| ·主要的技术路线 | 第24-26页 |
| ·实验技术手段 | 第26-32页 |
| ·文库目标克隆子的获得 | 第26页 |
| ·目标克隆子的EST序列特征分析 | 第26页 |
| ·目标克隆子长度验证与CpMADSl基因cDNA获得 | 第26页 |
| ·CpMADSl基因的生物信息学分析 | 第26-27页 |
| ·CpMADSl基因半定量表达分析 | 第27页 |
| ·CpMADSl基因正反义表达载体的构建 | 第27-31页 |
| ·矮牵牛的遗传转化 | 第31页 |
| ·转基因植株的检测 | 第31-32页 |
| 第四章 结果与分析 | 第32-46页 |
| ·目标克隆子的EST序列特征 | 第32页 |
| ·蜡梅CpMADSl基因全长cDNA的获得与基因命名 | 第32-33页 |
| ·蜡梅CpMADSl基因的序列结构特征 | 第33-34页 |
| ·CpMADSl基因编码蛋白基本性质 | 第34页 |
| ·蜡梅CpMADSl基因编码蛋白同源性 | 第34-36页 |
| ·CpMADSl基因编码蛋白结构分析 | 第36-39页 |
| ·CpMADSl系统进化树分析 | 第39-41页 |
| ·CpMADSl表达分析 | 第41页 |
| ·CpMADSl正反义表达载体构建S/ACpMADSl | 第41-42页 |
| ·蜡梅CpMADSl基因转矮牵牛植株的获得 | 第42-43页 |
| ·转基因植株的生物学鉴定 | 第43-44页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第43-44页 |
| ·PCR鉴定 | 第44页 |
| ·转基因植株的观测 | 第44-46页 |
| 第五章 讨论 | 第46-48页 |
| ·全长CpMADSl基因cDNA的获得 | 第46页 |
| ·CpMADSl基因编码蛋白的预测 | 第46页 |
| ·CpMADSl属于AGL6亚家族基因 | 第46页 |
| ·表达载体的构建 | 第46-47页 |
| ·矮牵牛的遗传转化 | 第47页 |
| ·转基因植株的鉴定 | 第47-48页 |
| 第六章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 缩略词表 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
