| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-19页 |
| 1. 材料与方法 | 第19-29页 |
| ·实验材料 | 第19-22页 |
| ·主要试剂 | 第19-21页 |
| ·主要仪器 | 第21-22页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-29页 |
| ·产病毒包装细胞筛选后病毒上清液的制备 | 第22页 |
| ·病毒浓缩及病毒滴度的测定 | 第22-23页 |
| ·小鼠骨髓单个核细胞悬液的制备 | 第23页 |
| ·浓缩病毒上清转染骨髓单个核细胞 | 第23-24页 |
| ·RT-PCR 方法检测小鼠骨髓单个核细胞基因组中外源性mdr1 基因的嵌合 | 第24页 |
| ·免疫组化法检测小鼠骨髓单个核细胞的转染率 | 第24-25页 |
| ·肿瘤模型的制备、分组 | 第25-26页 |
| ·程序性移植及化疗 | 第26页 |
| ·肿瘤治疗效果检测 | 第26-27页 |
| ·外源性mdr1 基因在超剂量化疗中对骨髓造血功能的保护 | 第27页 |
| ·免疫组化方法检测转染的mdr1 基因在移植小鼠体内表达的测定 | 第27页 |
| ·RT-PCR 法检测转染的mdr1 基因在移植小鼠体内分布 | 第27页 |
| ·FISH 检测mdr1 基因转染造血干细胞的骨髓归巢和体内分布 | 第27-28页 |
| ·病理学检查 | 第28-29页 |
| ·数据处理 | 第29页 |
| 2 结果 | 第29-39页 |
| ·产病毒包装细胞筛选后病毒上清液的浓缩及病毒滴度 | 第29页 |
| ·骨髓单个核细胞的转染培养 | 第29-30页 |
| ·RT-PCR 法在分子水平上检测外源性mdr1 基因在骨髓单个核细胞基因组中的整合 | 第30-31页 |
| ·免疫组化法检测小鼠骨髓单个核细胞的转染率 | 第31页 |
| ·肝癌荷瘤小鼠模型及程序性移植 | 第31页 |
| ·肿瘤治疗效果 | 第31-33页 |
| ·原位肿瘤监测 | 第31-32页 |
| ·生存时间 | 第32-33页 |
| ·超剂量化疗中骨髓造血功能的保护 | 第33-35页 |
| ·mdr1 基因在荷瘤小鼠骨髓单个核细胞表达情况 | 第35-36页 |
| ·免疫组化法检测移植后小鼠骨髓单个核细胞mdr1基因的表达 | 第35页 |
| ·RT-PCR 法检测移植后小鼠骨髓单个核细胞mdr1 基因的表达 | 第35-36页 |
| ·mdr1 基因移植荷瘤小鼠后在化疗中药物诱导的富集效应 | 第36-37页 |
| ·化疗时mdr1 基因在荷瘤小鼠体内的表达 | 第37-38页 |
| ·P-gp 在肿瘤组织的表达 | 第38页 |
| ·FISH 监测外源性mdr1 基因在体内的分布和归巢 | 第38页 |
| ·mdr1 基因转染对荷瘤小鼠重要脏器的影响 | 第38-39页 |
| ·HE 染色病理检查 | 第38-39页 |
| ·电镜病理学检查 | 第39页 |
| 3 讨论 | 第39-53页 |
| ·mdr1 基因转染造血干祖细胞移植提高其耐药性 | 第39-41页 |
| ·mdr1 基因转染骨髓单个核细胞移植及小鼠模型的建立 | 第41-43页 |
| ·mdr1 基因转染移植后对造血功能的影响 | 第43-45页 |
| ·mdr1 基因介导骨髓保护化疗时在骨髓的归巢、表达及富集效应 | 第45-47页 |
| ·mdr1 基因介导的骨髓保护在荷瘤小鼠的分布及肿瘤的耐药 | 第47-49页 |
| ·mdr1 基因介导的骨髓保护在荷瘤小鼠化疗时的安全性 | 第49-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 图片资料 | 第60-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第84页 |
