| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-11页 |
| 1 引言 | 第11-23页 |
| ·羊水细胞 | 第11-12页 |
| ·羊水的产前应用 | 第11页 |
| ·羊水中的细胞类型 | 第11-12页 |
| ·羊水源干细胞的发现及命名 | 第12-13页 |
| ·羊水中存在多潜能细胞 | 第12-13页 |
| ·羊水源干细胞的命名 | 第13页 |
| ·AFSC 分离及建系 | 第13-15页 |
| ·AFSC 的体外分离 | 第13-14页 |
| ·AFSC 的培养建系 | 第14-15页 |
| ·AFSC 的生物特性 | 第15-17页 |
| ·AFSC 形态学特性及增殖能力 | 第15页 |
| ·AFSC 的表面标记 | 第15-17页 |
| ·AFSC 分化潜能 | 第17-19页 |
| ·神经细胞 | 第17-18页 |
| ·成骨细胞 | 第18页 |
| ·肝细胞 | 第18页 |
| ·肌细胞 | 第18-19页 |
| ·脂肪细胞 | 第19页 |
| ·肾脏及内皮细胞 | 第19页 |
| ·AFSC 与其他类型的干细胞 | 第19-20页 |
| ·AFSC 的应用 | 第20-21页 |
| ·生产克隆动物 | 第20-21页 |
| ·组织工程 | 第21页 |
| ·基因治疗 | 第21页 |
| ·蒙古羊 AFSC 的研究意义 | 第21-23页 |
| 2 试验材料与方法 | 第23-32页 |
| ·试验材料 | 第23页 |
| ·试验动物 | 第23页 |
| ·试验药品及试剂 | 第23页 |
| ·仪器设备 | 第23页 |
| ·试验方法 | 第23-32页 |
| ·溶液配置 | 第23-24页 |
| ·蒙古羊 AFSC 的原代培养 | 第24页 |
| ·胎龄对 AFSC 的影响 | 第24-25页 |
| ·AFSC 培养体系的筛选 | 第25页 |
| ·AFSC 的冷冻保存 | 第25-26页 |
| ·AFSC 的解冻和培养 | 第26页 |
| ·生长曲线的绘制及细胞群体倍增时间的测定 | 第26页 |
| ·染色体数目分析 | 第26-27页 |
| ·RT-PCR 检测AFSC 表达的干细胞标志基因 | 第27-29页 |
| ·细胞总 RNA 提取 | 第27页 |
| ·cDNA 合成 | 第27-28页 |
| ·PCR 反应 | 第28-29页 |
| ·多向分化潜能检测 | 第29-30页 |
| ·形成类胚体 | 第29页 |
| ·类胚体 RT-PCR 检测 | 第29-30页 |
| ·向成骨细胞诱导及相关检测 | 第30-32页 |
| ·向成骨细胞诱导 | 第30页 |
| ·矿化结节茜素红染色 | 第30-31页 |
| ·碱性磷酸酶活性检测 | 第31-32页 |
| ·细胞悬液的准备 | 第31页 |
| ·碱性磷酸酶检测方法 | 第31-32页 |
| 3 结果 | 第32-39页 |
| ·AFSC 细胞形态 | 第32页 |
| ·胎龄对细胞贴壁率及活性影响 | 第32-33页 |
| ·AFSC 培养体系的筛选 | 第33-34页 |
| ·AFSC 的冻存及复苏对细胞形态及活性的影响 | 第34页 |
| ·生长曲线的绘制及细胞群体倍增时间的测定 | 第34-35页 |
| ·染色体数目分析 | 第35页 |
| ·RT-PCR 检测结果 | 第35-36页 |
| ·AFSC 多向分化潜能检测结果 | 第36-37页 |
| ·向成骨细胞诱导结果 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-43页 |
| ·AFSC 的分离培养 | 第39页 |
| ·AFSC 生长特性 | 第39-40页 |
| ·AFSC 鉴定 | 第40-41页 |
| ·蒙古羊 AFSC 向成骨细胞分化 | 第41-43页 |
| 5 结论 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 作者简介 | 第52页 |