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巨桉不同种源群体遗传结构的RAPD分析

中文摘要第1-5页
巨桉不同种源群体遗传结构的RAPD分析第5页
前言第5页
1 桉树分子育种研究进展第5-12页
 1.1 桉树基因工程遗传转化分子研究第5-7页
 1.2 分子标记在桉树分子育种中的应用第7-12页
  1.2.1 遗传图谱的构建第7-8页
  1.2.2 构建无性系指纹图谱第8-9页
  1.2.3 群体遗传变异和系统进化分类第9-11页
  1.2.4 分子标记辅助选择第11-12页
 1.3 问题与展望第12页
2 本文选题的目的和意义第12-13页
3 巨桉不同种源群体遗传结构的RAPD分析第13-44页
 3.1 桉树叶片DNA抽提及浓度测定第13-22页
  3.1.1 材料和方法第13-16页
   3.1.1.1 实验材料与试剂第13-14页
    3.1.1.1.1 实验材料第13-14页
    3.1.1.1.2 DNA抽提试剂第14页
    3.1.1.1.3 仪器设备第14页
   3.1.1.2 实验方法和步骤第14页
   3.1.1.2.1 桉树叶片DNA抽提第14-15页
   3.1.1.2.2 DNA浓度的测定第15-16页
  3.1.2 结果与分析第16-20页
   3.1.2.1 DNA抽提第16-17页
   3.1.2.2 DNA浓度测定第17-20页
  3.1.3 结论与讨论第20-22页
   3.1.3.1 桉树叶片的DNA提取方法第20-21页
   3.1.3.2 DNA的浓度和纯度第21页
   3.1.3.3 DNA样品的保存第21-22页
 3.2 RAPD实验条件的研究及引物筛选第22-33页
  3.2.1 材料和方法第23-25页
   3.2.1.1 实验材料与试剂第23页
    3.2.1.1.1 实验材料第23页
    3.2.1.1.2 药品试剂第23页
    3.2.1.1.3 仪器设备第23页
   3.2.1.2 实验方法和步骤第23-25页
    3.2.1.2.1 PCR反应第23-24页
    3.2.1.2.2 RAPD反应产物检测第24-25页
    3.2.1.2.3 RAPD引物筛选第25页
  3.2.2 结果与分析第25-28页
   3.2.2.1 PCR扩增体系的确定第25-27页
   3.2.2.2 PCR循环条件第27-28页
   3.2.2.3 RAPD引物筛选第28页
  3.2.3 结论与讨论第28-33页
   3.2.3.1 PCR扩增体系的优化第28-29页
   3.2.3.2 PCR循环参数的设定第29-30页
   3.2.3.3 凝胶电泳应注意的几个问题第30-32页
   3.2.3.4 有关RAPD引物筛选第32页
   3.2.3.5 有关RAPD重复性问题第32-33页
 3.3 巨桉不同种源群体遗传结构的RAPD分析第33-44页
  3.3.1. 材料和方法第33-35页
   3.3.1.1 实验材料与引物第33-35页
    3.3.1.1.1 实验材料第33-34页
    3.3.1.1.2 RAPD引物及试剂第34-35页
   3.3.1.2 实验方法第35页
  3.3.2 扩增产物的分析方法第35-36页
   3.3.2.1 带的记录第35页
   3.3.2.2 遗传多样性水平的度量和变异的分布第35-36页
    3.3.2.2.1 多态位点的百分率第35页
    3.3.2.2.2 遗传分化指数(DC)和遗传分化指数比率(PDC)第35-36页
    3.3.2.2.3 遗传一致度与遗传距离分析第36页
  3.3.3 结果与分析第36-43页
   3.3.3.1 RAPD标化类型第36-38页
   3.3.3.2 多态位点的百分率第38-39页
   3.3.3.3 不同种源DC值分析第39页
   3.3.3.4 巨桉种源群体遗传结构的PDC值分析第39-40页
   3.3.3.5 种源间遗传一致度分析第40页
   3.3.3.6 巨桉不同种源RAPD分析聚类图第40-43页
  3.3.4 结论与讨论第43-44页
   3.3.4.1 现有巨桉种源中存在较丰富的遗传多样性第43-44页
   3.3.4.2 巨桉不同种源群体之间的遗传结构关系第44页
   3.3.4.3 DC值和PDC值分析是遗传结构分析的有效方法第44页
4 小结与讨论第44-45页
参考文献第45-53页
Abstract(英文摘要)第53-54页
致谢第54-55页
附录第55-57页

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