| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第9-17页 |
| 实验部分 | 第17-39页 |
| A 嗜水气单胞菌J-1株W菌毛的提纯及生化、免疫特性分析 | 第17-26页 |
| 摘要 | 第17-18页 |
| 1 材料与方法 | 第18-20页 |
| 1．1 W菌毛的提取 | 第18页 |
| 1．1．1 菌株复壮 | 第18页 |
| 1．1．2 电镜观察 | 第18页 |
| 1．1．3 W菌毛的提取 | 第18页 |
| 1．2 W菌毛的提纯 | 第18页 |
| 1．3 W菌毛的理化性质分析 | 第18-19页 |
| 1．3．1 分子量的测定 | 第18-19页 |
| 1．3．2 糖蛋白染色 | 第19页 |
| 1．4 W菌毛免疫学特性分析 | 第19页 |
| 1．4．1 W菌毛抗血清的制备 | 第19页 |
| 1．4．2 免疫转印 | 第19页 |
| 1．4．2．1 半干转印法免疫转印 | 第19页 |
| 1．4．2．2 酶联免疫复合物染色 | 第19页 |
| 1．5 W菌毛的表达特性 | 第19-20页 |
| 1．5．1 温度的影响 | 第19-20页 |
| 1．5．2 培养基的影响 | 第20页 |
| 1．5．3 不同抽提方法的比较 | 第20页 |
| 2 结果 | 第20-24页 |
| 2．1 电镜观察 | 第20-22页 |
| 2．2 W菌毛的纯化 | 第22页 |
| 2．3 W菌毛的理化性质 | 第22页 |
| 2．3．1 SDS-PAGE | 第22页 |
| 2．3．2 糖蛋白染色 | 第22页 |
| 2．4 W菌毛免疫学特性 | 第22-23页 |
| 2．5 W菌毛的表达特性 | 第23-24页 |
| 3 讨论 | 第24-26页 |
| B 嗜水气单胞菌J-1株粘附素的粘附特性 | 第26-34页 |
| 摘要 | 第26-27页 |
| 1 材料与方法 | 第27-28页 |
| 1．1 试验菌株及培养 | 第27页 |
| 1．2 细胞培养 | 第27页 |
| 1．3 W菌毛提取及抗血清的制备 | 第27页 |
| 1．4 血凝特性分析 | 第27页 |
| 1．4．1 血凝试验 | 第27页 |
| 1．4．2 血凝抑制试验 | 第27页 |
| 1．5 细胞粘附 | 第27-28页 |
| 1．5．1 EPC细胞粘附 | 第27页 |
| 1．5．2 EPC细胞粘附抑制 | 第27-28页 |
| 1．5．3 HEp-2细胞粘附 | 第28页 |
| 1．5．4 HEp-2细胞粘附抑制 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-32页 |
| 2．1 血凝试验 | 第28-29页 |
| 2．2 血凝抑制试验 | 第29页 |
| 2．3 细胞粘附 | 第29-32页 |
| 2．3．1 EPC细胞粘附及粘附抑制试验 | 第29页 |
| 2．3．2 HEp-2细胞粘附 | 第29页 |
| 2．3．3 HEp-2细胞粘附抑制试验 | 第29-32页 |
| 3 讨论 | 第32-34页 |
| C 嗜水气单胞菌J-1株W菌毛基因定位 | 第34-39页 |
| 摘要 | 第34页 |
| 1 材料与方法 | 第34-35页 |
| 1．1 重组质粒的构建 | 第34-35页 |
| 1．1．1 Ah J-1株基因组DNA的提取和酶切分析 | 第34页 |
| 1．1．2 线性化载体的获得和连接 | 第34-35页 |
| 1．1．3 连接物转化大肠杆菌感受态细胞 | 第35页 |
| 1．2 重组菌的表达 | 第35页 |
| 1．3 阳性克隆的筛选 | 第35页 |
| 1．3．1 Dot-ELISA检测 | 第35页 |
| 1．3．2 免疫转印检测 | 第35页 |
| 1．4 重组质粒的酶切、鉴定 | 第35页 |
| 2 结果 | 第35-37页 |
| 2．1 限制性内切酶的选择 | 第35页 |
| 2．2 重组质粒在大肠杆菌中的表达 | 第35-37页 |
| 2．3 重组质粒的酶切、鉴定 | 第37页 |
| 3 讨论 | 第37-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 英文摘要 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-48页 |
| 致谢 | 第48页 |