| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| ·引言 | 第12-13页 |
| ·小麦转基因的方法 | 第13-15页 |
| ·基因枪法 | 第13-14页 |
| ·农杆菌介导法 | 第14页 |
| ·花粉管通道法 | 第14-15页 |
| ·小麦抗病基因转化研究进展 | 第15-16页 |
| ·小麦抗病毒基因遗传转化 | 第15-16页 |
| ·小麦抗真菌基因遗传转化 | 第16页 |
| ·植物脂质转运蛋白基因LTP 研究进展 | 第16-19页 |
| ·植物脂质转运蛋白基本性质与存在状态 | 第16-17页 |
| ·脂质转运蛋白的功能 | 第17-18页 |
| ·LTP 基因转化的意义 | 第18-19页 |
| ·小麦转基因面临的问题 | 第19-20页 |
| ·转化体系不完善 | 第19页 |
| ·外源基因在后代表达中的不确定性和沉默现象 | 第19页 |
| ·转基因安全性 | 第19-20页 |
| ·我国转基因研究缺少专利 | 第20页 |
| ·前期遗传转化体系的建立 | 第20-22页 |
| ·本研究的目的意义 | 第20页 |
| ·研究内容与技术路线 | 第20-21页 |
| ·主要技术路线如下所示 | 第21-22页 |
| 第二章 小麦转化体系的建立与优化 | 第22-29页 |
| ·实验材料和方法 | 第22-24页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-24页 |
| ·实验结果与分析 | 第24-27页 |
| ·头孢霉素浓度对愈伤组织分化的影响 | 第24-25页 |
| ·Timentin 对愈伤组织分化的影响 | 第25-26页 |
| ·Timentin 对农杆菌侵染后愈伤组织分化的影响 | 第26-27页 |
| ·筛选过程中最适PPT 浓度 | 第27页 |
| ·讨论 | 第27-29页 |
| 第三章 表达载体构建 | 第29-36页 |
| ·材料与方法 | 第29-33页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·方法 | 第30-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-34页 |
| ·载体pAHC25-LTP 的构建 | 第33-34页 |
| ·载体pBI121-LTP 和pCAMBIA1302-LTP 的构建 | 第34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 基因枪法转化小麦 | 第36-44页 |
| ·实验材料和方法 | 第36-40页 |
| ·实验材料 | 第36页 |
| ·方法 | 第36-40页 |
| ·实验结果与分析 | 第40-43页 |
| ·转化植株的获得 | 第40页 |
| ·PPT 涂抹结果 | 第40-41页 |
| ·转基因植物的分子检测 | 第41-42页 |
| ·转基因植物的抗病性检测 | 第42-43页 |
| ·讨论 | 第43-44页 |
| 第五章 农杆菌介导法转化小麦 | 第44-49页 |
| ·材料与方法 | 第44-46页 |
| ·材料 | 第44页 |
| ·方法 | 第44-46页 |
| ·实验结果与分析 | 第46-48页 |
| ·pBI121-LTP 转化C58C1 菌株的PCR 检测 | 第46页 |
| ·pBI121 转化C58C1 菌株的PCR 检测 | 第46-47页 |
| ·GUS 染色 | 第47-48页 |
| ·转化植株的获得 | 第48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| 第六章 花粉管通道法转化小麦 | 第49-51页 |
| ·实验材料和方法 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·方法 | 第49-50页 |
| ·实验结果与分析 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| 第七章 总结与后续研究 | 第51-53页 |
| ·总结 | 第51-52页 |
| ·转化条件筛选 | 第51页 |
| ·载体构建 | 第51页 |
| ·LTP 基因转化 | 第51-52页 |
| ·后续研究 | 第52页 |
| ·转基因植株抗病性鉴定 | 第52页 |
| ·转基因植株分子生物学鉴定 | 第52页 |
| ·存在的问题 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 附录1 实验所需主要试剂的配制 | 第58-60页 |
| 附录2 主要试验仪器 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
