| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第1章 研究综述 | 第15-29页 |
| 1.1 黄精概况 | 第15-22页 |
| 1.1.1 黄精生物学特征与生长发育特性 | 第15-16页 |
| 1.1.2 黄精本草考证 | 第16-17页 |
| 1.1.3 黄精资源分布及蕴藏量 | 第17页 |
| 1.1.4 黄精中主要化学成分 | 第17-18页 |
| 1.1.5 黄精的药用价值与药理活性 | 第18-21页 |
| 1.1.6 黄精种质资源研究 | 第21-22页 |
| 1.2 研究方法概况 | 第22-25页 |
| 1.2.1 糖组学研究 | 第22-23页 |
| 1.2.2 代谢组学研究 | 第23-24页 |
| 1.2.3 转录组研究 | 第24页 |
| 1.2.4 多糖代谢通路研究 | 第24-25页 |
| 1.3 立题背景、研究内容及意义 | 第25-29页 |
| 1.3.1 立题背景 | 第25-26页 |
| 1.3.2 研究意义 | 第26页 |
| 1.3.3 研究内容和技术路线 | 第26-29页 |
| 第2章 黄精种质表型多样性分析 | 第29-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-31页 |
| 2.1.1 采样 | 第29-30页 |
| 2.1.2 采样地气象信息 | 第30-31页 |
| 2.2 研究方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 表型指标统计 | 第31-34页 |
| 2.2.2 种质资源规范化描述 | 第34页 |
| 2.2.3 统计分析 | 第34-35页 |
| 2.3 结果与分析 | 第35-48页 |
| 2.3.1 黄精表型性状差异显著性分析 | 第35-44页 |
| 2.3.2 黄精表型性状变异分析 | 第44页 |
| 2.3.3 黄精表型性状相关分析 | 第44-45页 |
| 2.3.4 黄精种质聚类分析 | 第45-47页 |
| 2.3.5 黄精表型与生态因子关联分析 | 第47-48页 |
| 2.4 小结和讨论 | 第48-51页 |
| 第3章 不同种质黄精多糖结构分析 | 第51-81页 |
| 3.1 实验材料和试剂 | 第51-53页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第51-52页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第52页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第52-53页 |
| 3.2 实验方法 | 第53-56页 |
| 3.2.1 不同种质多糖提取 | 第53页 |
| 3.2.2 不同种质多糖的单糖组成分析 | 第53-54页 |
| 3.2.3 多糖纯化 | 第54页 |
| 3.2.4 多糖表观性状鉴定 | 第54-55页 |
| 3.2.5 黄精纯多糖结构分析 | 第55-56页 |
| 3.3 实验结果 | 第56-78页 |
| 3.3.1 不同黄精种质粗多糖含量分析 | 第56-57页 |
| 3.3.2 不同种质黄精多糖的单糖组成分析 | 第57-62页 |
| 3.3.3 多糖纯化结果 | 第62-64页 |
| 3.3.4 多糖表观性状分析 | 第64-65页 |
| 3.3.5 黄精纯化多糖结构分析 | 第65-78页 |
| 3.4 小结和讨论 | 第78-81页 |
| 第4章 不同种质黄精代谢组分析 | 第81-99页 |
| 4.1 实验材料与试剂 | 第81-82页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第81-82页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第82页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第82页 |
| 4.2 实验方法 | 第82-84页 |
| 4.2.1 样品处理 | 第82页 |
| 4.2.2 样品检测 | 第82-83页 |
| 4.2.3 数据统计分析 | 第83-84页 |
| 4.3 实验结果 | 第84-96页 |
| 4.3.1 不同种质LC-MS轮廓分析 | 第84-85页 |
| 4.3.2 总体样本的偏最小二乘方-判别分析(PLS-DA) | 第85-87页 |
| 4.3.3 可能生物标记物的筛选结果 | 第87-92页 |
| 4.3.4 二级质谱鉴定结果 | 第92页 |
| 4.3.5 热图分析 | 第92页 |
| 4.3.6 相关性分析结果 | 第92-93页 |
| 4.3.7 代谢物箱式图与Z-score分析结果 | 第93-95页 |
| 4.3.8 化合物KEGG注释 | 第95-96页 |
| 4.4 小结和讨论 | 第96-99页 |
| 第5章 黄精转录组研究及多糖合成通路分析 | 第99-131页 |
| 5.1 试剂与材料 | 第99页 |
| 5.1.1 试剂 | 第99页 |
| 5.1.2 材料 | 第99页 |
| 5.2 方法 | 第99-105页 |
| 5.2.1 提取总RNA | 第99-100页 |
| 5.2.2 RNA文库的构建、质控及测序 | 第100页 |
| 5.2.3 生物信息学分析 | 第100-102页 |
| 5.2.4 内参基因的筛选 | 第102-104页 |
| 5.2.5 多糖合成通路基因qRT-PCR检测 | 第104-105页 |
| 5.2.6 多糖合成基因的组织部位表达分析 | 第105页 |
| 5.3 结果和讨论 | 第105-129页 |
| 5.3.1 测序统计结果 | 第105-106页 |
| 5.3.2 序列拼接 | 第106-107页 |
| 5.3.3 Unigene的功能注释分析 | 第107-110页 |
| 5.3.4 基因结构分析 | 第110-113页 |
| 5.3.5 黄精Unigene pathway分析 | 第113-115页 |
| 5.3.6 黄精多糖代谢通路分析 | 第115-118页 |
| 5.3.7 差异基因表达分析 | 第118-121页 |
| 5.3.8 黄精内参基因筛选结果 | 第121-126页 |
| 5.3.9 多糖合成通路基因表达水平检测 | 第126-128页 |
| 5.3.10 多糖合成基因的组织部位表达分析 | 第128-129页 |
| 5.4 小结和讨论 | 第129-131页 |
| 第6章 黄精种质的SSR分子标记开发及DNA指纹图谱构建 | 第131-143页 |
| 6.1 实验试剂与材料 | 第131-132页 |
| 6.1.1 实验试剂 | 第131页 |
| 6.1.2 实验材料 | 第131-132页 |
| 6.2 实验方法 | 第132-134页 |
| 6.2.1 总DNA提取 | 第132页 |
| 6.2.2 PCR扩增 | 第132-134页 |
| 6.2.3 PCR产物的变性 | 第134页 |
| 6.2.4 PCR产物的检测 | 第134页 |
| 6.2.5 数据处理 | 第134页 |
| 6.2.6 指纹图谱构建 | 第134页 |
| 6.3 实验结果 | 第134-141页 |
| 6.3.1 DNA提取结果 | 第134-135页 |
| 6.3.2 SSR扩增多态性分析结果 | 第135-137页 |
| 6.3.3 指纹图谱构建 | 第137-139页 |
| 6.3.4 聚类和主成分分析 | 第139-140页 |
| 6.3.5 DNA指纹图谱QR编码 | 第140-141页 |
| 6.4 小结和讨论 | 第141-143页 |
| 第7章 结论 | 第143-145页 |
| 参考文献 | 第145-161页 |
| 附录 | 第161-197页 |
| 致谢 | 第197-199页 |
| 攻读博士学位期间的研究成果 | 第199-200页 |
