| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1 前言 | 第12-13页 |
| 2 中国养鸭现状 | 第13页 |
| 3 三穗鸭简介 | 第13-15页 |
| 4 DRD4、5-HT1A和PMEL-17受体基因研究进展 | 第15-19页 |
| 4.1 DRD4基因研究进展 | 第15-17页 |
| 4.2 5-HT1A基因研究进展 | 第17-19页 |
| 4.3 PMEL-17基因研究进展 | 第19页 |
| 5 生物信息学简介 | 第19页 |
| 6 生物信息数据库 | 第19-20页 |
| 7 生物信息学研究内容 | 第20-21页 |
| 8 生物信息学应用 | 第21页 |
| 9 本研究的目的与意义 | 第21-23页 |
| 第二章 三穗鸭DRD4、5-HT1A和PMEL-17基因表达分析 | 第23-36页 |
| 1 实验材料与方法 | 第23-25页 |
| 1.1 实验动物及饲养 | 第23-24页 |
| 1.2 样品采集 | 第24页 |
| 1.3 主要仪器 | 第24-25页 |
| 1.4 主要试剂 | 第25页 |
| 2 试验方法 | 第25-28页 |
| 2.1 总RNA提取 | 第25-26页 |
| 2.2 RT-PCR合成cDNA第一链 | 第26页 |
| 2.3 PCR引物设计和扩增条件优化 | 第26-28页 |
| 3 结果和分析 | 第28-34页 |
| 3.1 RNA的纯度与完整性 | 第28页 |
| 3.2 荧光定量PCR的灵敏性和可靠性 | 第28-29页 |
| 3.3 溶解曲线与假阳性 | 第29-30页 |
| 3.4 基因表达差异分析 | 第30-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 4.1 关于5-HT1A基因的组织表达 | 第34页 |
| 4.2 关于DRD4基因的组织表达 | 第34-35页 |
| 4.3 关于PMEL-17基因的组织表达 | 第35-36页 |
| 第三章 三穗鸭PMEL-17基因的生物信息学分析 | 第36-47页 |
| 1.实验材料 | 第36页 |
| 1.1 实验动物样本 | 第36页 |
| 1.2 样品采集 | 第36页 |
| 1.3 主要试剂 | 第36页 |
| 2 试验方法 | 第36-42页 |
| 2.1 总RNA提取 | 第36-37页 |
| 2.2 RT-PCR合成cDNA第一链 | 第37-38页 |
| 2.3 实验仪器 | 第38页 |
| 2.4 PCR引物设计和扩增条件优化 | 第38-39页 |
| 2.5 PCR产物回收 | 第39-40页 |
| 2.6 基因克隆 | 第40页 |
| 2.7 基因克隆筛选 | 第40-41页 |
| 2.8 基因克隆测序 | 第41页 |
| 2.9 生物信息学分析 | 第41-42页 |
| 3.结果与分析 | 第42-46页 |
| 3.1 PCR扩增结果 | 第42页 |
| 3.2 PMEL-17基因生物信息学分析 | 第42-46页 |
| 4.讨论 | 第46-47页 |
| 第四章 结论与展望 | 第47-48页 |
| 1.结论 | 第47页 |
| 2.展望 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附录 | 第55-59页 |
| 附录Ⅰ 作者简介 | 第55-56页 |
| 一、基本情况 | 第55页 |
| 二、参与发表论文 | 第55-56页 |
| 三、参加的科研课题 | 第56页 |
| 附录Ⅱ 论文第二、三章使用主要仪器 | 第56页 |
| 附录Ⅲ 英文缩略表 | 第56-57页 |
| 附录Ⅳ 图样 | 第57-59页 |
| 实验图片 | 第57-59页 |