| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-21页 |
| 1.1 白菜类作物分子遗传及定位研究 | 第12-17页 |
| 1.1.1 白菜类作物的分子遗传图谱研究 | 第12-13页 |
| 1.1.2 白菜类作物农艺性状相关的QTL定位相关研究 | 第13-17页 |
| 1.2 植物叶片叶缘裂刻研究进展 | 第17-20页 |
| 1.2.1 植物叶缘裂刻研究概况 | 第17-19页 |
| 1.2.3 白菜作物裂叶遗传分析 | 第19页 |
| 1.2.4 白菜作物叶缘裂刻分子标记及叶裂QTL定位 | 第19-20页 |
| 1.3 研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 干旱胁迫对叶缘裂刻不结球白菜的生理特性的影响 | 第21-28页 |
| 2.1 材料 | 第21页 |
| 2.2 方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 样品处理 | 第21页 |
| 2.2.2 不同浓度PEG处理 | 第21页 |
| 2.2.3 测定指标及方法 | 第21-22页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第22页 |
| 2.3 结果 | 第22-25页 |
| 2.3.1 PEG干旱胁迫对叶片萎蔫指数影响 | 第22页 |
| 2.3.2 PEG干旱胁迫对植株失水率和相对含水量的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.3 PEG干旱胁迫对叶片细胞质膜相对透性的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.5 PEG干旱胁迫对叶片丙二醛(MDA)含量的影响 | 第24页 |
| 2.3.6 PEG干旱胁迫对叶片抗氧化酶活性的影响 | 第24-25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-28页 |
| 第三章 不结球白菜叶缘裂刻基因的精细定位 | 第28-39页 |
| 3.1 材料 | 第28页 |
| 3.2 方法 | 第28-31页 |
| 3.2.1 白菜叶缘裂刻近等基因系植株形态特征调查 | 第28-29页 |
| 3.2.2 F_2-11分离群体的遗传分析 | 第29页 |
| 3.2.3 DNA提取与混合池的构建 | 第29页 |
| 3.2.4 SCAR、SNP、SSR、InDel标记的开发 | 第29-30页 |
| 3.2.5 多态性分子标记的分析 | 第30页 |
| 3.2.6 遗传连锁图谱的构建 | 第30-31页 |
| 3.3 结果与分析 | 第31-37页 |
| 3.3.1 不结球白菜叶缘裂刻近等基因系植株的形态特征 | 第31-32页 |
| 3.3.2 F_2-11群体的遗传分析 | 第32页 |
| 3.3.3 ScGa3PM32标记的共显性转化 | 第32-33页 |
| 3.3.4 多态性标记的筛选 | 第33-35页 |
| 3.3.5 多态性标记对群体的分析 | 第35-36页 |
| 3.3.6 F_2-11群体中BrcLL基因的精细定位 | 第36页 |
| 3.3.7 BrcLL基因的物理图谱 | 第36-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 与不结球白菜叶缘裂刻基因链锁的多态性标记在十字花科作物中的鉴定分析 | 第39-44页 |
| 4.1 材料 | 第39页 |
| 4.2 方法 | 第39-40页 |
| 4.2.1 DNA提取、PCR及扩增产物分析 | 第39页 |
| 4.2.2 与BrcLL基因连锁标记分析 | 第39页 |
| 4.2.3 数据统计与聚类分析 | 第39-40页 |
| 4.3 结果与分析 | 第40-42页 |
| 4.3.1 多态性标记引物在试验材料中的有效扩增率 | 第40-41页 |
| 4.3.2 多态性标记引物在十字花科种质遗传鉴定分析 | 第41-42页 |
| 4.4 讨论 | 第42-44页 |
| 第五章 主要结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 作者简介 | 第52页 |
