| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 英文缩略语 | 第13-17页 |
| 第一部分 :大鼠脊髓缺血再灌损伤后自噬的激活及microRNA-204表达的改变 | 第17-42页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-29页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第18-21页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.2 实验动物分组 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-29页 |
| 2.3.1 脊髓缺血再灌注损伤模型的建立 | 第21-22页 |
| 2.3.2 大鼠后肢运动功能评分 | 第22页 |
| 2.3.3 标本收集 | 第22-23页 |
| 2.3.4 电镜检测方法 | 第23页 |
| 2.3.5 HE染色 | 第23-24页 |
| 2.3.6 免疫组化实验方法 | 第24-25页 |
| 2.3.7 Western blot测定 | 第25-27页 |
| 2.3.8 Real-time PCR测定 | 第27-29页 |
| 2.4 统计学处理 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-38页 |
| 3.1 各组大鼠生理指标和血流动力学参数变化 | 第29-30页 |
| 3.2 大鼠后肢运动功能检测结果 | 第30-31页 |
| 3.3 各组大鼠脊髓组织病理学检测结果 | 第31-32页 |
| 3.4 透射电镜及免疫组化检测大鼠脊髓组织自噬特异性蛋白LC3ll的表达 | 第32-34页 |
| 3.5 脊髓缺血后不同时间点LC3、Beclin1、bcl-2、microRNA-204的表达 | 第34-38页 |
| 4 讨论 | 第38-42页 |
| 第二部分 :抑制microRNA-204改变自噬活性调节凋亡在脊髓缺血再灌注损伤早期大鼠神经功能的影响及相关机制对 | 第42-66页 |
| 1 前言 | 第42-43页 |
| 2 材料与方法 | 第43-53页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第43-45页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第43页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第43-44页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第44-45页 |
| 2.2 实验动物分组 | 第45-46页 |
| 2.3 实验方法 | 第46-53页 |
| 2.3.1 鞘内注射方法 | 第46页 |
| 2.3.2 脊髓缺血再灌注损伤模型的建立 | 第46页 |
| 2.3.3 术后处理 | 第46-47页 |
| 2.3.4 大鼠后肢运动功能评分 | 第47页 |
| 2.3.5 标本的采集 | 第47页 |
| 2.3.6HE染色 | 第47-48页 |
| 2.3.7 TUNEL检测 | 第48-49页 |
| 2.3.8 Western blot测定法 | 第49-51页 |
| 2.3.9 Real-time PCR | 第51-53页 |
| 2.4 统计学处理 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-63页 |
| 3.1 大鼠的存活率和排除率 | 第53页 |
| 3.2 大鼠后肢运动功能检测 | 第53-55页 |
| 3.3 脊髓组织病理学变化结果 | 第55-56页 |
| 3.4 各组大鼠脊髓前角健存运动神经元细胞计数 | 第56-57页 |
| 3.5 各组大鼠脊髓前角凋亡细胞计数 | 第57-58页 |
| 3.6 Qrt-PCR法检测micro RNA-204的表达及Westem blot法检测蛋白Beclinl、LC3、bcl-2及csapase-3的表达 | 第58-63页 |
| 4 讨论 | 第63-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 综述 | 第76-91页 |
| 参考文献 | 第84-91页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简历 | 第93页 |
