中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-15页 |
研究现状、成果 | 第13-14页 |
研究目的、方法 | 第14-15页 |
一、hUC-MSCs移植治疗急性TBI大鼠的效果和机制研究 | 第15-37页 |
1.1 对象与方法 | 第16-26页 |
1.1.1 实验大鼠 | 第16页 |
1.1.2 分离和培养hUC-MSCs | 第16-18页 |
1.1.3 大鼠急性颅脑损伤模型的建立 | 第18-19页 |
1.1.4 TBI模型鼠的术后处理 | 第19页 |
1.1.5 模型鉴定标准及评分 | 第19-20页 |
1.1.6 293T细胞培养及传代 | 第20-21页 |
1.1.7 慢病毒感染293T细胞和hUC-MSCs | 第21页 |
1.1.8 hUC-MSCs移植 | 第21-22页 |
1.1.9 脑组织固定及脑单细胞悬液制备方法 | 第22-23页 |
1.1.10 流式分析 | 第23页 |
1.1.11 脑组织的切片制作 | 第23-25页 |
1.1.12 免疫组织化学染色及MVD评定 | 第25页 |
1.1.13 HE染色 | 第25页 |
1.1.14 免疫荧光 | 第25-26页 |
1.1.15 神经损伤评分 | 第26页 |
1.1.16 统计学处理 | 第26页 |
1.2 结果 | 第26-34页 |
1.2.1 观察人脐带间充质干细胞形态 | 第26-28页 |
1.2.2 慢病毒转染293T和hUC-MSCs | 第28页 |
1.2.3 流式检测脑组织单细胞悬液干细胞标志物 | 第28-30页 |
1.2.4 干细胞移植示踪及微血管密度(MVD)的变化 | 第30-31页 |
1.2.5 HE染色结果 | 第31-32页 |
1.2.6 移植后脑组织BDNF和GFAP表达情况 | 第32-33页 |
1.2.7 神经损伤评分情况 | 第33-34页 |
1.3 讨论 | 第34-36页 |
1.4 小结 | 第36-37页 |
二、hUC-MSCs对急性脑缺血再灌注损伤大鼠的作用研究 | 第37-49页 |
2.1 对象与方法 | 第37-46页 |
2.1.1 实验大鼠 | 第37-38页 |
2.1.2 主要仪器 | 第38页 |
2.1.3 主要试剂与耗材 | 第38页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第38-40页 |
2.1.5 分离与培养hUC-MSCs | 第40页 |
2.1.6 大鼠MCAO-R模型的建立和细胞移植处理 | 第40页 |
2.1.7 脑组织总RNA的提取 | 第40-42页 |
2.1.8 cDNA第一链合成 | 第42页 |
2.1.9 PCR扩增反应 | 第42-43页 |
2.1.10 琼脂糖凝胶电泳 | 第43页 |
2.1.11 总蛋白的提取 | 第43-44页 |
2.1.12 蛋白电泳及检测 | 第44-46页 |
2.1.13 免疫组化 | 第46页 |
2.1.14 统计学处理 | 第46页 |
2.2 结果 | 第46-48页 |
2.2.1 干细胞移植后对IL-6和BDNFmRNA和蛋白水平的影响 | 第46-47页 |
2.2.2 干细胞移植后对脑组织BDNF的影响-免疫组化结果 | 第47-48页 |
2.3 讨论 | 第48页 |
2.4 小结 | 第48-49页 |
三、TBI患者hUC-MSCs移植治疗后脑脊液蛋白质组学变化的研究 | 第49-69页 |
3.1 对象和方法 | 第49-50页 |
3.1.1 样本信息 | 第49-50页 |
3.1.2 样本分组及处理 | 第50页 |
3.1.3 LC-SWATH模式质谱检测 | 第50页 |
3.2 结果 | 第50-67页 |
3.2.1 谱图库构建 | 第50-52页 |
3.2.2 SWATH定量 | 第52-58页 |
3.2.3 GO注释 | 第58-61页 |
3.2.4 Pathway代谢通路注释 | 第61-63页 |
3.2.5 差异蛋白GO富集分析 | 第63-66页 |
3.2.6 差异蛋白Pathway富集 | 第66-67页 |
3.3 讨论 | 第67-68页 |
3.4 小结 | 第68-69页 |
全文结论 | 第69-70页 |
论文创新点 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-81页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第81-82页 |
综述 干细胞治疗的颅脑创伤基础与临床 | 第82-95页 |
综述参考文献 | 第87-95页 |
致谢 | 第95-96页 |
个人简历 | 第96页 |