| 内容摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 研究背景及文献综述 | 第16-53页 |
| 第二章 稳定遗传AzFRS/tRNA_(CUA)基因的转基因小鼠构建 | 第53-81页 |
| 第一节 引言 | 第53-54页 |
| 第二节 材料与方法 | 第54-69页 |
| 2.1 实验材料 | 第54-62页 |
| 2.2 实验方法 | 第62-69页 |
| 第三节 实验结果与讨论 | 第69-80页 |
| 3.1 异源aaRSs/tRNA_(CUA)正交对表达载体的优化构建 | 第69-70页 |
| 3.2 RS(tRNA)_(nx)质粒在HEK293T细胞中的正交性检测与比较 | 第70-73页 |
| 3.3 RS(tRNA)_(4x)表达质粒在MEF细胞中的功能正交性检测 | 第73-74页 |
| 3.4 RS(tRNA)_(4x)转基因小鼠的构建及鉴定 | 第74-76页 |
| 3.5 RS(tRNA)_(4x)基因在转基因小鼠中有效生殖传递及其拷贝数 | 第76-79页 |
| 3.6 RS(tRNA)_(4x)转基因小鼠的主要组织中均表达AzFRS | 第79-80页 |
| 第四节 小结 | 第80-81页 |
| 第三章 RS(tRNA)_(4x)转基因小鼠生理功能检测 | 第81-92页 |
| 第一节 引言 | 第81-82页 |
| 第二节 材料与方法 | 第82-85页 |
| 2.1 实验材料 | 第82-83页 |
| 2.2 实验方法 | 第83-85页 |
| 第三节 实验结果与讨论 | 第85-91页 |
| 3.1 RS(tRNA)_(4x)转基因小鼠与WT小鼠主要组织的HE染色无显著差异 | 第85页 |
| 3.2 RS(tRNA)_(4x)转基因小鼠与WT小鼠肝脏组织的转录组比较 | 第85-89页 |
| 3.3 RS(tRNA)_(4x)转基因小鼠与WT小鼠血液生化指标并无显著差异 | 第89-91页 |
| 第四节 小结 | 第91-92页 |
| 第四章 转基因小鼠来源的原代细胞内基因编码AzF | 第92-105页 |
| 第一节 前言 | 第92-93页 |
| 第二节 材料与方法 | 第93-99页 |
| 2.1 实验材料 | 第93-97页 |
| 2.2 实验方法 | 第97-99页 |
| 第三节 实验结果与讨论 | 第99-104页 |
| 3.1 AZF在转基因小鼠的神经细胞中的定点整合 | 第99-101页 |
| 3.2 AzF在转基因小鼠的骨髓细胞中的定点整合 | 第101-103页 |
| 3.3 AZF不能在转基因小鼠的成纤维细胞中定点整合 | 第103-104页 |
| 第四节 小结 | 第104-105页 |
| 第五章 遗传密码子扩充的转基因斑马鱼的构建 | 第105-116页 |
| 第一节 前言 | 第105页 |
| 第二节 材料与方法 | 第105-109页 |
| 2.1 实验材料 | 第105-107页 |
| 2.2 实验方法 | 第107-109页 |
| 第三节 实验结果与讨论 | 第109-114页 |
| 3.1 利用Tol2转座子技术构建RS(tRNA)_(4x)转基因斑马鱼 | 第109-111页 |
| 3.2 AzF在RS(tRNA)_(4x)转基因斑马体内的定点整合 | 第111-114页 |
| 第四节 小结 | 第114-116页 |
| 第六章 总结与展望 | 第116-120页 |
| 参考文献 | 第120-138页 |
| 附录Ⅰ 用于原核注射的载体RS(tRNA)_(4x)序列 | 第138-141页 |
| 附录Ⅱ 本论文中所用引物序列列表 | 第141-142页 |
| 附录Ⅲ 略缩词表 | 第142-143页 |
| 攻读博士学位期间取得的成果 | 第143-144页 |
| 致谢 | 第144-148页 |
