| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 肿瘤免疫治疗研究进展概述 | 第12-14页 |
| 1.1.1 肿瘤的发生与发展 | 第12页 |
| 1.1.2 肿瘤免疫治疗 | 第12-14页 |
| 1.2 免疫检查点相关背景 | 第14-16页 |
| 1.2.1 PD-1、PD-L1和PD-L2信号分子 | 第14页 |
| 1.2.2 应用免疫检查点抑制剂治疗肿瘤 | 第14-16页 |
| 1.3 可溶性PD-1分子生物学特性 | 第16-18页 |
| 1.3.1 可溶性PD-1分子结构及其生理功能 | 第16-17页 |
| 1.3.2 可溶性PD-1分子在抗肿瘤免疫中的应用 | 第17-18页 |
| 1.4 论文立题依据和研究思路 | 第18-20页 |
| 1.4.1 立题依据 | 第18-19页 |
| 1.4.2 研究思路 | 第19-20页 |
| 第2章 材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 质粒、病毒、菌株、细胞株和实验动物 | 第20-21页 |
| 2.1.2 合成引物 | 第21-22页 |
| 2.1.3 抗体 | 第22页 |
| 2.1.4 合成肽 | 第22页 |
| 2.1.5 常规实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.6 主要实验仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.2.1 基因合成 | 第23页 |
| 2.2.2 质粒的构建与制备 | 第23-24页 |
| 2.2.3 质粒的大量提取和定量 | 第24页 |
| 2.2.4 人可溶性PD-1蛋白的原核表达和纯化 | 第24-25页 |
| 2.2.5 细胞实验常规操作 | 第25页 |
| 2.2.6 Western Blot蛋白印迹检测 | 第25-26页 |
| 2.2.7 免疫学评价 | 第26-29页 |
| 2.2.8 动物实验常规操作 | 第29页 |
| 2.2.9 免疫程序和给药方式 | 第29-30页 |
| 2.2.10 肿瘤模型小鼠的免疫治疗 | 第30页 |
| 2.3 数据统计方法 | 第30-31页 |
| 第3章 实验结果与讨论 | 第31-64页 |
| 3.1 sPD1/MS融合肿瘤基因疫苗的构建和表达 | 第31-35页 |
| 3.1.1 CpVR-sPD1疫苗的构建 | 第32页 |
| 3.1.2 CpDV-IL2-sPD1/MS融合肿瘤基因疫苗的构建 | 第32-34页 |
| 3.1.3 CpDV-IL2-sPD1/MS融合肿瘤基因疫苗的真核表达 | 第34页 |
| 3.1.4 小结 | 第34-35页 |
| 3.2 sPD1/MS融合肿瘤基因疫苗的免疫原性研究 | 第35-50页 |
| 3.2.1 sPD1与肿瘤抗原MS联合的疫苗形式优化 | 第35-38页 |
| 3.2.2 sPD1/MS疫苗对特异性免疫的提高作用 | 第38-40页 |
| 3.2.3 sPD1/MS疫苗增强特异性免疫活性机制的初步研究 | 第40-47页 |
| 3.2.4 sPD1/MS疫苗产生有效性的机制 | 第47-50页 |
| 3.2.5 小结 | 第50页 |
| 3.3 sPD1/MS融合肿瘤基因疫苗抗肿瘤活性研究 | 第50-61页 |
| 3.3.1 sPD1/MS疫苗治疗黑色素瘤模型小鼠 | 第51-53页 |
| 3.3.2 sPD1/MS疫苗治疗结直肠癌模型小鼠 | 第53-55页 |
| 3.3.3 sPD1/MS疫苗对荷瘤小鼠的抗肿瘤活性机制 | 第55-60页 |
| 3.3.4 小结 | 第60-61页 |
| 3.4 sPD1/MS融合肿瘤基因疫苗与化疗药物联合治疗肿瘤 | 第61-64页 |
| 3.4.1 小鼠的免疫策略 | 第61-62页 |
| 3.4.2 sPD1/MS疫苗与奥沙利铂联合治疗荷瘤小鼠的抑瘤效果 | 第62页 |
| 3.4.3 sPD1/MS疫苗与奥沙利铂联合治疗荷瘤小鼠的生存期观察 | 第62-63页 |
| 3.4.4 小结 | 第63-64页 |
| 第4章 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
