| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 杜仲叶黄酮概述 | 第14-16页 |
| 1.1.1 杜仲黄酮的种类 | 第14-15页 |
| 1.1.2 杜仲黄酮研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2 黄酮苷与苷元的差异性 | 第16-17页 |
| 1.2.1 结构差异 | 第16页 |
| 1.2.2 活性差异 | 第16页 |
| 1.2.3 吸收与代谢差异 | 第16-17页 |
| 1.3 黄酮的水解及纯化工艺 | 第17-18页 |
| 1.3.1 水解黄酮常用的方法 | 第17-18页 |
| 1.3.2 聚酰胺树脂在分离纯化黄酮类物质中的应用 | 第18页 |
| 1.4 小分子物质与牛血清白蛋白相互作用的研究 | 第18-23页 |
| 1.4.1 血清白蛋白的结构及特征 | 第18-19页 |
| 1.4.2 研究活性成分与牛血清白蛋白作用的意义 | 第19-20页 |
| 1.4.3 金属离子对小分子物质与蛋白质分子结合作用的影响 | 第20页 |
| 1.4.4 小分子物质与血清白蛋白相互作用的研究方法 | 第20-22页 |
| 1.4.5 活性小分子与蛋白质分子之间相互作用的研究现状及发展动态 | 第22-23页 |
| 1.5 杜仲免疫活性的研究进展 | 第23-24页 |
| 1.5.1 免疫活性评价简述 | 第23-24页 |
| 1.5.2 杜仲免疫活性研究 | 第24页 |
| 1.6 本课题研究意义和主要内容 | 第24-26页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第24-25页 |
| 1.6.2 主要内容 | 第25-26页 |
| 第2章 杜仲叶中黄酮苷元检测方法的建立 | 第26-32页 |
| 2.1 实验材料、试剂和仪器 | 第26页 |
| 2.1.1 实验材料和试剂 | 第26页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.2.1 液相色谱条件 | 第26页 |
| 2.2.2 样品制备方法 | 第26-27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-31页 |
| 2.3.1 色谱条件的优化 | 第27-28页 |
| 2.3.2 方法学考察 | 第28-29页 |
| 2.3.3 杜仲样品中黄酮苷元含量的测定 | 第29-31页 |
| 2.4 小结 | 第31-32页 |
| 第3章 杜仲黄酮苷元制备和富集工艺研究 | 第32-39页 |
| 3.1 材料、试剂与仪器 | 第32页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第32页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 杜仲黄酮苷元检测方法 | 第32-33页 |
| 3.2.2 杜仲叶提取物的制备方法 | 第33页 |
| 3.2.3 水解制备杜仲黄酮苷元工艺研究 | 第33页 |
| 3.2.4 杜仲黄酮苷元的富集工艺研究 | 第33-34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-38页 |
| 3.3.1 水解工艺单因素试验结果 | 第34-36页 |
| 3.3.2 水解工艺正交试验结果分析 | 第36-37页 |
| 3.3.3 杜仲黄酮苷元富集效果研究 | 第37-38页 |
| 3.4 小结 | 第38-39页 |
| 第4章 杜仲黄酮与牛血清白蛋白相互作用研究 | 第39-55页 |
| 4.1 材料、试剂与仪器 | 第39-40页 |
| 4.1.1 实验材料与试剂 | 第39页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第39-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-41页 |
| 4.2.1 实验溶液的配制 | 第40页 |
| 4.2.2 杜仲黄酮与BSA的相互作用研究 | 第40-41页 |
| 4.2.3 金属离子对杜仲黄酮与BSA相互作用的干扰 | 第41页 |
| 4.3 结果与分析 | 第41-54页 |
| 4.3.1 紫外-可见吸收光谱的变化 | 第41页 |
| 4.3.2 猝灭剂对BSA荧光猝灭效应 | 第41-43页 |
| 4.3.3 荧光猝灭机理及猝灭常数的确定 | 第43-44页 |
| 4.3.4 结合常数和结合位点的计算 | 第44-46页 |
| 4.3.5 热力学参数及分子间作用力的考察 | 第46-49页 |
| 4.3.6 分子间的能量转移和结合距离的计算 | 第49-51页 |
| 4.3.7 猝灭剂对牛血清白蛋白构象产生的影响 | 第51-54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 第5章 杜仲黄酮免疫活性初探 | 第55-64页 |
| 5.1 材料、试剂与仪器 | 第55页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第55页 |
| 5.1.2 实验样品 | 第55页 |
| 5.1.3 实验试剂 | 第55页 |
| 5.1.4 实验仪器 | 第55页 |
| 5.2 实验方法 | 第55-59页 |
| 5.2.1 溶液的配制 | 第55-57页 |
| 5.2.2 小鼠脾淋巴细胞悬液的制备 | 第57页 |
| 5.2.3 细胞活力检测及计数 | 第57-58页 |
| 5.2.4 MTT法检测小鼠脾淋巴细胞的增殖 | 第58页 |
| 5.2.5 细胞上清中IL-2 和IFN-γ的诱生 | 第58页 |
| 5.2.6 细胞因子IL-2 和IFN-γ的测定 | 第58-59页 |
| 5.2.7 统计学处理 | 第59页 |
| 5.3 结果与分析 | 第59-63页 |
| 5.3.1 杜仲黄酮及苷元对小鼠脾淋巴细胞增殖的影响 | 第59-61页 |
| 5.3.2 杜仲黄酮及苷元对IL-2 和IFN-γ含量的影响 | 第61-63页 |
| 5.4 小结 | 第63-64页 |
| 第6章 结论 | 第64-66页 |
| 6.1 杜仲叶中黄酮苷元检测方法的建立 | 第64页 |
| 6.2 杜仲黄酮苷元制备和富集工艺研究 | 第64页 |
| 6.3 杜仲黄酮与牛血清白蛋白相互作用研究 | 第64-65页 |
| 6.4 杜仲黄酮免疫活性初探 | 第65-66页 |
| 第7章 创新点与展望 | 第66-67页 |
| 7.1 创新点 | 第66页 |
| 7.2 不足之处 | 第66页 |
| 7.3 展望 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 作者在学期间取得的学术成果 | 第74-75页 |
