| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词 | 第7-10页 |
| 1. 引言 | 第10-20页 |
| 1.1 植物阶段转变 | 第10页 |
| 1.2 MicroRNA156调控阶段转变 | 第10-12页 |
| 1.3 miR156的转录调控及影响因素 | 第12-15页 |
| 1.3.1 赤霉素 | 第12-13页 |
| 1.3.2 糖 | 第13-14页 |
| 1.3.3 上游调控的转录因子 | 第14-15页 |
| 1.4 氧化还原与阶段转变的关系 | 第15-16页 |
| 1.5 阶段转变的表观遗传调控 | 第16-18页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 2. 材料和方法 | 第20-33页 |
| 2.1 苹果实生树阶段转变过程中miR156以及MdMIR156基因家族的变化 | 第20-25页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第20-25页 |
| 2.2 苹果实生树阶段转变过程中糖代谢通路的变化分析 | 第25-26页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第25页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第25-26页 |
| 2.3 苹果miR156与氧化还原关系的分析 | 第26-27页 |
| 2.3.1 试验材料 | 第26页 |
| 2.3.2 试验试剂 | 第26页 |
| 2.3.3 试验方法 | 第26-27页 |
| 2.4 苹果实生树阶段转变过程中H_2O_2的来源 | 第27-29页 |
| 2.4.1 试验材料 | 第27页 |
| 2.4.2 试验试剂 | 第27-28页 |
| 2.4.3 试验方法 | 第28-29页 |
| 2.5 多组学联合分析预测验证苹果MdMIR156上游基因 | 第29-33页 |
| 2.5.1 试验材料 | 第29页 |
| 2.5.2 试验试剂 | 第29页 |
| 2.5.3 试验方法 | 第29-33页 |
| 3. 结果与分析 | 第33-59页 |
| 3.1 苹果实生树阶段转变过程中miR156调控途径 | 第33-38页 |
| 3.1.1 苹果实生树阶段转变过程中miR156及其靶基因MdSPL的变化 | 第33-34页 |
| 3.1.2 苹果实生树阶段转变过程中MdMIR156和MdHYL的变化 | 第34-38页 |
| 3.2 苹果实生树阶段转变过程中糖代谢通路的变化 | 第38-39页 |
| 3.3 氧化还原参与苹果miR156调控 | 第39-46页 |
| 3.3.1 氧化还原变化对苹果miR156的影响 | 第39-43页 |
| 3.3.2 过表达或者抑制表达miR156对组织氧化还原平衡态的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 苹果实生树阶段转变过程中H_2O_2的来源 | 第44-46页 |
| 3.4 MdMIR156a5和MdMIR156a12特异转录因子筛选 | 第46-59页 |
| 3.4.1 苹果实生树阶段转变过程中差异基因的筛选 | 第46-53页 |
| 3.4.2 苹果实生树阶段转变过程中DNA甲基化的变化 | 第53-54页 |
| 3.4.3 MdMIR156上游调控基因的预测与验证 | 第54-56页 |
| 3.4.4 DNA甲基化对MdMIR156a5和MdMIR156a12转录的影响 | 第56-59页 |
| 4. 讨论 | 第59-63页 |
| 4.1 苹果实生树阶段转变过程中miR156受转录水平调控 | 第59页 |
| 4.2 苹果实生树阶段转变过程中氧化还原平衡态处于miR156上游 | 第59-60页 |
| 4.3 GSH水平及GSH/GSSG比值与MdMIR156转录调控密切相关 | 第60-61页 |
| 4.4 DNA甲基化参与MdMIR156转录调控 | 第61-63页 |
| 5. 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 附录 | 第75-97页 |
| 个人简介 | 第97页 |
