| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 主要缩略语词汇表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-28页 |
| 1.1 光/暗调节气孔运动 | 第10-11页 |
| 1.2 COP1与植物气孔运动的关系 | 第11-14页 |
| 1.2.1 COP1与光形态建成 | 第11-13页 |
| 1.2.2 COP1与植物气孔运动 | 第13-14页 |
| 1.3 光周期开花调节因子与气孔运动的关系 | 第14-18页 |
| 1.3.1 光周期开花调节途径 | 第14-17页 |
| 1.3.2 光周期开花调节因子与气孔运动 | 第17-18页 |
| 1.4 COP1与光周期开花调节因子的相互关系 | 第18页 |
| 1.5 H_2O_2与植物气孔运动的关系 | 第18-22页 |
| 1.5.1 H_2O_2的产生 | 第18-20页 |
| 1.5.2 H_2O_2的清除 | 第20-21页 |
| 1.5.3 H_2O_2在气孔运动中的作用 | 第21-22页 |
| 1.6 NO与植物气孔运动的关系 | 第22-25页 |
| 1.6.1 NO的产生 | 第22-24页 |
| 1.6.2 NO的清除 | 第24页 |
| 1.6.3 NO在气孔运动中的作用 | 第24-25页 |
| 1.7 选题依据及意义 | 第25-28页 |
| 第2章 材料与方法 | 第28-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.2 主要试剂及仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第28页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-42页 |
| 2.3.1 实验材料培养 | 第29-30页 |
| 2.3.2 实验材料处理及气孔开度分析 | 第30页 |
| 2.3.3 保卫细胞内源H_2O_2及NO的检测 | 第30-31页 |
| 2.3.4 转基因植物的构建 | 第31-39页 |
| 2.3.5 GUS染色观察 | 第39页 |
| 2.3.6 植物RNA的提取和反转录 | 第39-40页 |
| 2.3.7 半定量PCR | 第40-42页 |
| 第3章 实验结果与分析 | 第42-52页 |
| 3.1 COP1在暗诱导拟南芥气孔关闭中起正调节作用 | 第42-43页 |
| 3.2 HY5不参与暗诱导的拟南芥气孔关闭 | 第43-44页 |
| 3.3 COP1介导暗诱导拟南芥气孔关闭与H_2O_2的关系 | 第44-46页 |
| 3.3.1 外源H_2O_2处理对cop1突变体气孔开度的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.2 暗处理对cop1突变体保卫细胞内源H_2O_2水平的影响 | 第45-46页 |
| 3.4 COP1介导暗诱导拟南芥气孔关闭与NO的关系 | 第46-47页 |
| 3.4.1 外源SNP处理对cop1突变体气孔开度的影响 | 第46页 |
| 3.4.2 暗处理对cop1突变体保卫细胞内源NO水平的影响 | 第46-47页 |
| 3.5 COP1介导暗诱导拟南芥气孔关闭与光周期开花调节因子FT、TSF、SOC1的关系 | 第47-50页 |
| 3.5.1 暗诱导气孔关闭与其抑制了保卫细胞光周期开花调节因子的基因表达有关 | 第47-49页 |
| 3.5.2 COP1介导暗诱导气孔关闭与其抑制了光周期开花调节因子的基因表达有关 | 第49-50页 |
| 3.6 光周期途径的开花调节因子FT、TSF和SOC1对保卫细胞H_2O_2和NO形成的影响 | 第50-52页 |
| 第4章 讨论 | 第52-56页 |
| 4.1 COP1参与暗诱导气孔关闭,且其作用在H_2O_2的下游和NO的上游 | 第52-53页 |
| 4.2 光周期途径的开花调节因子是暗诱导气孔关闭的负调节因子 | 第53-54页 |
| 4.3 COP1抑制光周期途径开花调节因子的基因表达是其介导暗诱导保卫细胞NO形成和气孔关闭的原因之一 | 第54-56页 |
| 第5章 总结 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
