| 前言 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第1章 绪论 | 第14-24页 |
| 1.1 肿瘤标记物 | 第15-24页 |
| 1.1.1 糖链抗原 | 第15-20页 |
| 1.1.2 人附睾蛋白 4(Human Epididymis Protein 4, HE4) | 第20页 |
| 1.1.3 酪氨酸激酶受体(trkA) | 第20-22页 |
| 1.1.4 微型干扰 RNA(miRNA) | 第22-24页 |
| 第2章 表观遗传在卵巢癌研究中的应用 | 第24-37页 |
| 2.1 表观遗传学简介 | 第24-30页 |
| 2.2 血管内皮生长因子 | 第30-31页 |
| 2.3 碳酸酐酶 9 | 第31-32页 |
| 2.4 缺氧诱导因子 1‐α | 第32-33页 |
| 2.5 人类斯钙素 1 | 第33-34页 |
| 2.6 主要组织相容性复合体 P5 | 第34页 |
| 2.7 hMOF 简介 | 第34-35页 |
| 2.8 本文的立题依据 | 第35-37页 |
| 第3章 人卵巢癌组织中 hMOF mRNA 及蛋白表达水平 | 第37-48页 |
| 3.1 材料 | 第37-39页 |
| 3.1.1 组织 | 第37页 |
| 3.1.2 主要实验试剂与相关仪器 | 第37-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 反转录聚合酶链反应（RT-PCR） | 第39页 |
| 3.2.2 免疫印迹 | 第39-40页 |
| 3.2.3 免疫组化染色 | 第40-41页 |
| 3.3 结果 | 第41-48页 |
| 3.3.1 在卵巢癌组织中 hMOF mRNA 表达水平呈降低趋势 | 第41-44页 |
| 3.3.2 qPCR 证实 hMOF 在卵巢癌组织中表达下调 | 第44-48页 |
| 第4章 卵巢癌组织中 hMOF 调控基因 HCP5 表达水平 | 第48-57页 |
| 4.1 材料 | 第48页 |
| 4.1.1 组织 | 第48页 |
| 4.2 主要实验试剂与相关仪器 | 第48-49页 |
| 4.2.1 实验相关试剂 | 第48页 |
| 4.2.2 仪器及耗材 | 第48-49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-50页 |
| 4.3.1 RNAi 干扰和 DNA 芯片数据分析 | 第49页 |
| 4.3.2 染色质免疫沉淀法（ChIP） | 第49-50页 |
| 4.4 结果 | 第50-57页 |
| 4.4.1 在卵巢癌组织中 hMOF 调控基因 HCP5 呈下调趋势 | 第50-57页 |
| 第5章 讨论 | 第57-64页 |
| 第6章 结论 | 第64-65页 |
| 创新点 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-79页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
