摘要 | 第10-14页 |
Abstract | 第14-18页 |
前言 | 第19-21页 |
第一章 斑点热群立克次体的分离鉴定 | 第21-41页 |
1.1 材料 | 第21-23页 |
1.1.1 标本采集 | 第21-22页 |
1.1.2 主要试剂耗材 | 第22-23页 |
1.1.3 主要仪器 | 第23页 |
1.2 方法 | 第23-35页 |
1.2.1 基因组DNA提取 | 第23-24页 |
1.2.2 斑点热群立克次体基因片段扩增 | 第24-31页 |
1.2.3 立克次体系统进化分析 | 第31页 |
1.2.4 细胞培养及立克次体分离 | 第31-32页 |
1.2.5 吉姆萨染色 | 第32-33页 |
1.2.6 超薄切片电镜 | 第33页 |
1.2.7 立克次体抗血清制备 | 第33-34页 |
1.2.8 立克次体抗原片制备及间接免疫荧光实验 | 第34-35页 |
1.3 结果 | 第35-40页 |
1.3.1 立克次体分离结果 | 第35页 |
1.3.2 拉欧蒂立克次体形态学观察 | 第35-36页 |
1.3.3 拉欧蒂立克次体基因片段扩增及系统进化树分析 | 第36-39页 |
1.3.4 间接免疫荧光实验结果 | 第39-40页 |
1.4 讨论 | 第40-41页 |
第二章 米亚莫托疏螺旋体哨点医院监测及蜱感染调查 | 第41-62页 |
2.1 材料 | 第42-45页 |
2.1.1 哨点医院监测 | 第42页 |
2.1.2 标本采集 | 第42-43页 |
2.1.3 主要试剂耗材 | 第43-44页 |
2.1.4 主要仪器 | 第44-45页 |
2.2 方法 | 第45-53页 |
2.2.1 现场工作技术路线 | 第45页 |
2.2.2 从标本中提取基因组DNA | 第45-46页 |
2.2.3 米亚莫托疏螺旋体基因片段扩增 | 第46-53页 |
2.2.4 米亚莫托疏螺旋体进化分析 | 第53页 |
2.3 结果 | 第53-59页 |
2.3.1 哨点医院监测结果 | 第53-56页 |
2.3.2 米亚莫托疏螺旋体系统进化树分析 | 第56-57页 |
2.3.3 米亚莫托疏螺旋体患者流行病学及临床特征 | 第57-58页 |
2.3.4 自然疫源地调查结果 | 第58-59页 |
2.4 讨论 | 第59-62页 |
第三章 广西蜱病毒(GXTV)的分离鉴定及感染特征研究 | 第62-99页 |
3.1 材料 | 第63-65页 |
3.1.1 标本采集 | 第63-64页 |
3.1.2 主要试剂耗材 | 第64-65页 |
3.1.3 主要仪器 | 第65页 |
3.2 方法 | 第65-84页 |
3.2.1 RNA提取 | 第65-68页 |
3.2.2 病毒检测方法的建立 | 第68-73页 |
3.2.3 细胞培养及病毒分离 | 第73-75页 |
3.2.4 病毒全基因组测序及进化分析 | 第75页 |
3.2.5 病毒基因组酶消化实验 | 第75-77页 |
3.2.6 超薄切片电镜观察 | 第77页 |
3.2.7 病毒生长复制曲线绘制 | 第77-78页 |
3.2.8 RNA原位荧光杂交实验 | 第78-80页 |
3.2.9 蜱感染实验及定位感染器官 | 第80-81页 |
3.2.10 小鼠感染实验 | 第81页 |
3.2.11 动物宿主感染调查 | 第81页 |
3.2.12 宿主RNAi通路关键分子mRNA变化规律 | 第81-84页 |
3.3 结果 | 第84-96页 |
3.3.1 标本采集结果 | 第84页 |
3.3.2 蜱中GXTV的感染情况 | 第84页 |
3.3.3 GXTV的分离培养 | 第84-85页 |
3.3.4 GXTV全基因组特征 | 第85页 |
3.3.5 GXTV系统进化树分析 | 第85-86页 |
3.3.6 GXTV形态观察 | 第86-87页 |
3.3.7 GXTV在细胞中的生长规律 | 第87-91页 |
3.3.8 GXTV在细胞中的复制规律 | 第91-92页 |
3.3.9 GXTV感染蜱种及器官 | 第92-95页 |
3.3.10 GXTV感染实验室小鼠 | 第95页 |
3.3.11 野外动物感染调查 | 第95页 |
3.3.12 RNAi通路关键分子与GXTV感染相关关系 | 第95-96页 |
3.4 讨论 | 第96-99页 |
第四章 结论与展望 | 第99-100页 |
参考文献 | 第100-106页 |
附录 | 第106-109页 |
作者在学期间取得的学术成果 | 第109-110页 |
附件 | 第110-111页 |
主要简历 | 第111-112页 |
致谢 | 第112页 |