摘要 | 第4-10页 |
Abstract | 第10-15页 |
缩略词简表 | 第19-20页 |
前言 | 第20-22页 |
1 建立脂多糖小鼠脑水肿模型 | 第22-32页 |
1.1 材料 | 第22-23页 |
1.1.1 动物 | 第22页 |
1.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
1.1.3 主要仪器 | 第23页 |
1.2 方法 | 第23-26页 |
1.2.1 实验分组和模型建立 | 第23页 |
1.2.2 脑组织含水量测定 | 第23页 |
1.2.3 Real-time RT-PCR检测脑组织IL-1β和TNF-α mRNA含量 | 第23-25页 |
1.2.4 ELISA法检测脑组织IL-1β、TNF-α和IgG蛋白含量 | 第25-26页 |
1.2.5 统计学方法 | 第26页 |
1.3 结果 | 第26-29页 |
1.3.1 LPS不同剂量和不同作用时间对脑组织含水量变化的影响 | 第26-27页 |
1.3.2 LPS脑水肿时脑组织含水量及IgG含量的变化 | 第27-28页 |
1.3.3 LPS脑水肿时脑组织IL-1β和TNF-α等细胞因子的变化 | 第28-29页 |
1.4 讨论 | 第29-31页 |
1.5 结论 | 第31-32页 |
2 3%氯化钠对脂多糖小鼠脑水肿的保护作用及可能机制 | 第32-48页 |
2.1 材料 | 第32-34页 |
2.1.1 动物 | 第32页 |
2.1.2 主要试剂 | 第32-34页 |
2.1.3 主要仪器 | 第34页 |
2.2 方法 | 第34-39页 |
2.2.1 实验分组 | 第34-35页 |
2.2.2 脑组织含水量测定 | 第35页 |
2.2.3 ELISA法检测脑组织IL-1β、TNF-α和IgG含量 | 第35-36页 |
2.2.4 Real-time RT-PCR检测脑组织IL-1β、TNF-α和AQP-4mRNA含量 | 第36-38页 |
2.2.5 Western blotting检测脑组织AQP-4蛋白含量 | 第38-39页 |
2.2.6 统计学方法 | 第39页 |
2.3 结果 | 第39-45页 |
2.3.1 3%NaCl对LPS脑水肿脑组织含水量变化的影响 | 第39-40页 |
2.3.2 3%NaCl对LPS脑水肿脑组织IgG含量变化的影响 | 第40-41页 |
2.3.3 3%NaCl对LPS脑水肿时脑组织IL-1β、TNF-α等细胞因子含量变化的影响 | 第41-43页 |
2.3.4 3%NaCl对LPS脑水肿时脑组织AQP-4mRNA及蛋白变化的影响 | 第43-45页 |
2.4 讨论 | 第45-47页 |
2.5 结论 | 第47-48页 |
3 PKC在3%NaCl抑制AQP4表达中的作用 | 第48-64页 |
3.1 材料 | 第48-50页 |
3.1.1 动物 | 第48页 |
3.1.2 主要试剂 | 第48-50页 |
3.1.3 主要仪器 | 第50页 |
3.2 方法 | 第50-56页 |
3.2.1 动物实验分组 | 第50-51页 |
3.2.2 Western blotting检测脑组织脑组织膜PKCa含量 | 第51-52页 |
3.2.3 新生大鼠星形胶质细胞的培养 | 第52页 |
3.2.4 细胞实验分组 | 第52-53页 |
3.2.5 MTT法测细胞存活率 | 第53页 |
3.2.6 Real-time RT-PCR检测星形胶质细胞AQP-4mRNA含量 | 第53-55页 |
3.2.7 FCM(PE直接标记抗体法)检测星形胶质细胞膜表面AQP-4含量 | 第55页 |
3.2.8 统计学方法 | 第55-56页 |
3.3 结果 | 第56-61页 |
3.3.1 3%NaCl对小鼠脂多糖脑水肿时脑组织细胞膜性结构中PKCa含量的影响 | 第56-57页 |
3.3.2 3%NaCl对IL-1β诱导星形胶质细胞AQP4表达的影响 | 第57-58页 |
3.3.3 PKC抑制剂Calphostin C对3%NaCl抑制IL-lp诱导星形胶质细胞AQP4表达的影响 | 第58-61页 |
3.4 讨论 | 第61-63页 |
3.5 结论 | 第63-64页 |
结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-74页 |
综述一 | 第74-87页 |
参考文献 | 第82-87页 |
综述二 | 第87-96页 |
参考文献 | 第91-96页 |
攻读学位期间主要的研究成果目录 | 第96-97页 |
致谢 | 第97页 |