| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一章 核糖核酸酶T2蛋白的分离、纯化与鉴定 | 第16-38页 |
| 1.1 前言 | 第16页 |
| 1.2 材料和方法 | 第16-26页 |
| 1.2.1 实验材料与主要仪器 | 第16-23页 |
| 1.2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 1.3 结果 | 第26-37页 |
| 1.3.1 BCA法检测从黑曲霉菌培养液中获得的RNase T2蛋白浓度 | 第26-27页 |
| 1.3.2 SDS-PAGE电泳分离鉴定黑曲霉菌培养液中纯化的RNase T2蛋白 | 第27页 |
| 1.3.3 BCA法检测经阴离子交换层析分离纯化后的蛋白浓度 | 第27-29页 |
| 1.3.4 阴离子交换层析分离纯化蛋白的SDS-PAGE电泳 | 第29页 |
| 1.3.5 阴离子交换层析分离纯化蛋白的Western blot鉴定 | 第29-30页 |
| 1.3.6 质谱分析分别鉴定阴离子交换层析分离纯化蛋白 | 第30-32页 |
| 1.3.7 PubMed上搜索核糖核酸酶T2家族成员ACTIBIND氨基酸序列 | 第32-33页 |
| 1.3.8 阴离子交换层析分离纯化蛋白的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第33-34页 |
| 1.3.9 BCA蛋白浓度检测目的蛋白经凝胶切割回收后的蛋白浓度 | 第34-35页 |
| 1.3.10目的蛋白凝胶切割胶回收后SDS-PAGE电泳结果 | 第35-36页 |
| 1.3.11目的蛋白回收后Western blot鉴定结果 | 第36-37页 |
| 1.4 讨论 | 第37-38页 |
| 第二章 核糖核酸酶T2在雄性小鼠生殖器官、精子的表达及对小鼠精子运动能力影响的研究 | 第38-50页 |
| 2.1 前言 | 第38页 |
| 2.2 材料和方法 | 第38-43页 |
| 2.2.1 实验材料与主要仪器 | 第38-39页 |
| 2.2.2 主要实验方法 | 第39-43页 |
| 2.3 结果 | 第43-49页 |
| 2.3.1 雄性ICR小鼠各生殖器官间接免疫荧光定位核糖核酸酶T2 | 第43-44页 |
| 2.3.2 雄性小鼠各生殖器官内核糖核酸酶T2 mRNA的表达水平 | 第44-45页 |
| 2.3.3 小鼠附睾尾部精子间接免疫荧光法定位核糖核酸酶T2 | 第45-47页 |
| 2.3.4 不同浓度核糖核酸酶T2在不同时间点对小鼠精子运动力的影响 | 第47-49页 |
| 2.4 讨论 | 第49-50页 |
| 第三章 核糖核酸酶T2对人精子运动影响的研究 | 第50-59页 |
| 3.1 前言 | 第50页 |
| 3.2 材料和方法 | 第50-54页 |
| 3.2.1 实验材料与主要仪器 | 第50-51页 |
| 3.2.2 主要实验方法 | 第51-54页 |
| 3.3 结果 | 第54-57页 |
| 3.3.1 间接免疫荧光检测核糖核酸酶T2在正常精子上与actin的共定位 | 第54-55页 |
| 3.3.2 RNaseT2在不同时间点对人精子运动力的影响分析 | 第55-56页 |
| 3.3.3 RNaseT2在不同时间点对人精子前向运动力的影响分析 | 第56-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-59页 |
| 第四章 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 综述 | 第65-76页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 攻读硕士学位期间发表或待发表的论文、综述及奖励 | 第78页 |
