| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-21页 |
| 1.1 前言 | 第9页 |
| 1.2 信号分子一氧化氮 | 第9-12页 |
| 1.2.1 NO的产生途径 | 第10-11页 |
| 1.2.2 NO的生物信号转导机制 | 第11-12页 |
| 1.2.3 NO抗逆研究进展 | 第12页 |
| 1.3 信号分子一氧化碳 | 第12-14页 |
| 1.3.1 CO的产生途径 | 第13页 |
| 1.3.2 CO的生物信号转导机制 | 第13-14页 |
| 1.3.3 CO的抗逆研究进展 | 第14页 |
| 1.4 信号分子硫化氢 | 第14-16页 |
| 1.4.1 H_2S的产生途径 | 第15页 |
| 1.4.2 H_2S的生物信号转导机制 | 第15页 |
| 1.4.3 H_2S的抗逆研究进展 | 第15-16页 |
| 1.5 其他信号分子 | 第16-17页 |
| 1.6 甘油醛-3-磷酸脱氢酶 | 第17-19页 |
| 1.6.1 GAPDH的类型 | 第17页 |
| 1.6.2 逆境胁迫下GAPDH的应答及响应机理 | 第17-19页 |
| 1.6.3 GAPDH在小麦中的研究 | 第19页 |
| 1.7 研究目的和意义 | 第19-21页 |
| 第二章 外源CO、NO供体对干旱胁迫下小麦种子萌发及幼苗生理的影响 | 第21-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2 实验试剂 | 第21页 |
| 2.3 实验仪器 | 第21页 |
| 2.4 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.4.1 小麦种子的培养与处理 | 第21-22页 |
| 2.4.2 小麦幼苗的培养与处理 | 第22页 |
| 2.4.3 萌发指标的测定 | 第22-23页 |
| 2.4.4 RWC的测定 | 第23页 |
| 2.4.5 MDA的测定 | 第23页 |
| 2.4.6 可溶性蛋白含量的测定 | 第23页 |
| 2.4.7 可溶性糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.4.8 SOD活性的测定 | 第23-24页 |
| 2.4.9 数据分析 | 第24页 |
| 2.5 结果与分析 | 第24-31页 |
| 2.5.1 外源CO和NO对干旱胁迫下小麦种子萌发的影响 | 第24-25页 |
| 2.5.2 外源CO和NO对干旱胁迫下小麦幼苗RWC的影响 | 第25-26页 |
| 2.5.3 外源CO和NO对干旱胁迫下小麦种子及幼苗MDA含量的影响 | 第26-27页 |
| 2.5.4 外源CO和NO对干旱胁迫下小麦种子及幼苗可溶性糖含量的影响 | 第27-28页 |
| 2.5.5 外源CO和NO对干旱胁迫下小麦种子及幼苗可溶性蛋白含量的影响 | 第28-29页 |
| 2.5.6 外源CO和NO对干旱胁迫下小麦种子及幼苗SOD活性的影响 | 第29-31页 |
| 2.6 讨论与小结 | 第31-34页 |
| 2.6.1 讨论 | 第31-32页 |
| 2.6.2 小结 | 第32-34页 |
| 第三章 外源CO、NO供体对干旱胁迫下不同时期小麦GAPDH表达的影响 | 第34-46页 |
| 3.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.2 实验试剂 | 第34页 |
| 3.3 实验仪器 | 第34页 |
| 3.4 实验方法 | 第34-38页 |
| 3.4.1 SDS-PAGE检测GAPDH蛋白的表达 | 第34-36页 |
| 3.4.2 实时荧光定量PCR检测GAPDH基因的表达 | 第36-38页 |
| 3.5 结果与分析 | 第38-45页 |
| 3.5.1 小麦萌发初期种子蛋白SDS-PAGE电泳灰度扫描图谱 | 第38-39页 |
| 3.5.2 一叶一芯期小麦叶片蛋白SDS-PAGE电泳灰度扫描图谱 | 第39-41页 |
| 3.5.3 二叶一芯期小麦叶片蛋白SDS-PAGE电泳灰度扫描图谱 | 第41-42页 |
| 3.5.4 三叶一芯期小麦叶片蛋白SDS-PAGE电泳灰度扫描图谱 | 第42-44页 |
| 3.5.5 实时荧光定量PCR | 第44-45页 |
| 3.6 小结与讨论 | 第45-46页 |
| 3.6.1 讨论 | 第45页 |
| 3.6.2 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 结论与创新 | 第46-47页 |
| 4.1 结论 | 第46页 |
| 4.2 创新 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 附录 | 第53-56页 |
| 缩略词 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
