摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
第一章 绪论 | 第9-23页 |
1.1 研究背景 | 第9页 |
1.2 研究目的和意义 | 第9-10页 |
1.3 国内外研究现状 | 第10-20页 |
1.3.1 产甲烷菌研究现状 | 第10-12页 |
1.3.2 海洋的沉积物环境及特点 | 第12-14页 |
1.3.3 海洋沉积物中微生物群落研究 | 第14-16页 |
1.3.4 海洋油气与产甲烷菌关系 | 第16-18页 |
1.3.5 产甲烷菌的培养方法 | 第18-20页 |
1.4 研究内容及主要技术路线 | 第20-23页 |
1.4.1 研究内容 | 第20-21页 |
1.4.2 技术路线 | 第21-23页 |
第二章 常规培养海洋油气田样品中产甲烷菌活性及多样性 | 第23-41页 |
2.1 引言 | 第23-24页 |
2.2 样品与方法 | 第24-30页 |
2.2.1 样品特性样品采集及培养基 | 第24-25页 |
2.2.2 底物 | 第25-26页 |
2.2.3 油气田沉积物样品的产甲烷活性 | 第26页 |
2.2.4 产甲烷菌的富集培养 | 第26-27页 |
2.2.5 实验温度及 pH | 第27-28页 |
2.2.6 盐度 | 第28页 |
2.2.7 分析方法 | 第28页 |
2.2.8 DNA 提取及 PCR 扩增及系统解析 | 第28-30页 |
2.2.9 基因序列比对 | 第30页 |
2.3 结果与分析 | 第30-39页 |
2.3.1 油气田沉积物样品的产甲烷活性 | 第30-36页 |
2.3.2 产甲烷菌的富集培养 | 第36页 |
2.3.3 产甲烷菌的 16S rRNA 系统鉴定 | 第36-39页 |
2.4 讨论 | 第39页 |
2.5 本章小结 | 第39-41页 |
第三章 共生培养海洋油气田样品中产甲烷菌活性及多样性 | 第41-52页 |
3.1 引言 | 第41页 |
3.2 样品与方法 | 第41-44页 |
3.2.1 样品特性样品采集及培养基 | 第41页 |
3.2.2 底物 | 第41-42页 |
3.2.3 油气田沉积物样品的产甲烷活性 | 第42页 |
3.2.4 产甲烷菌的富集培养 | 第42-43页 |
3.2.5 实验温度及 pH | 第43页 |
3.2.6 盐度 | 第43页 |
3.2.7 分析方法 | 第43页 |
3.2.8 DNA 提取及 PCR 扩增及系统解析 | 第43-44页 |
3.2.9 基因序列比对 | 第44页 |
3.3 结果与分析 | 第44-50页 |
3.3.1 油气田沉积物样品的产甲烷活性 | 第44-48页 |
3.3.2 产甲烷菌的富集培养 | 第48-49页 |
3.3.3 产甲烷菌的 16S rRNA 系统鉴定 | 第49-50页 |
3.4 讨论 | 第50-51页 |
3.5 本章小结 | 第51-52页 |
第四章 海洋油气田沉积物中新菌的研究 | 第52-59页 |
4.1 引言 | 第52页 |
4.1.1 TQ1 的近缘菌 Pelotomaculum schinkii 的特性 | 第52页 |
4.1.2 TQ2 的近缘菌 Meniscus glaucopis 的特性 | 第52页 |
4.2 材料与方法 | 第52-55页 |
4.2.1 主要试剂和仪器 | 第52-53页 |
4.2.2 接种污泥与分离培养方法 | 第53-54页 |
4.2.3 生理生化特性分析 | 第54页 |
4.2.4 抗生素抗性 | 第54-55页 |
4.2.5 G+C 含量和主要脂肪酸测定 | 第55页 |
4.2.6 PCR 扩增及 16S rRNA 基因测序 | 第55页 |
4.3 结果 | 第55-58页 |
4.3.1 分离菌株形态特征 | 第55-56页 |
4.3.2 生理生化特性 | 第56-57页 |
4.3.3 G+C 含量 | 第57-58页 |
4.4 结论 | 第58-59页 |
第五章 结论 | 第59-61页 |
5.1 常规培养海洋油气田样品中产甲烷菌活性及多样性 | 第59页 |
5.2 共生培养海洋油气田样品中产甲烷菌活性及多样性 | 第59-60页 |
5.3 海洋油气田沉积物中两株新菌的研究 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-65页 |
附录A | 第65-73页 |
致谢 | 第73-75页 |
作者简介及在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第75-76页 |