| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第1章 前言 | 第9-11页 |
| 第2章 材料与方法 | 第11-18页 |
| 2.1 实验材料 | 第11-12页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第11页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第11页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第11-12页 |
| 2.2 实验方法 | 第12-17页 |
| 2.2.1 实验材料准备 | 第12页 |
| 2.2.2 SD 大鼠 BMSCs 的分离、培养 | 第12-13页 |
| 2.2.3 SD 大鼠 BMSCs 形态学观察及鉴定 | 第13页 |
| 2.2.4 细胞生长曲线测定 | 第13页 |
| 2.2.5 SD 大鼠 BMSCs 成脂分化诱导液配制 | 第13-15页 |
| 2.2.6 药物稀释及实验分组 | 第15页 |
| 2.2.7 油红 O 染色并计数 | 第15-16页 |
| 2.2.8 real-time PCR 检测 PPARγ2、C/EBPα表达水平 | 第16-17页 |
| 2.3 统计学处理 | 第17-18页 |
| 第3章 结果 | 第18-29页 |
| 3.1 观察细胞形态 | 第18-19页 |
| 3.2 SD 大鼠 BMSCs 表面抗原标记的鉴定 | 第19页 |
| 3.3 苔盼蓝计数及 MTT 测定细胞生长情况 | 第19-20页 |
| 3.4 成脂诱导后细胞形态学观察 | 第20-21页 |
| 3.5 油红 O 染色并计数 | 第21-26页 |
| 3.5.1 初筛药物干预后染色并计数 | 第21-24页 |
| 3.5.2 活性药物干预后染色并计数 | 第24-26页 |
| 3.6 real-time PCR 检测结果 | 第26-29页 |
| 3.6.1 目的基因及内参扩增曲线和溶解曲线 | 第26-27页 |
| 3.6.2 荧光定量 PCR 相对表达水平 | 第27-29页 |
| 第4章 讨论 | 第29-33页 |
| 4.1 大鼠 BMSCs 培养实验研究 | 第29-30页 |
| 4.1.1 细胞分离、培养、生长曲线 | 第29-30页 |
| 4.1.2 细胞鉴定 | 第30页 |
| 4.2 杜仲对 SD 大鼠 BMSC 抑制成脂分化有效成分筛选 | 第30-33页 |
| 4.2.1 成脂分化关键因子 | 第30页 |
| 4.2.2 活性成分筛选的研究 | 第30-33页 |
| 第5章 结论与展望 | 第33-34页 |
| 5.1 结论 | 第33页 |
| 5.2 展望 | 第33-34页 |
| 致谢 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 附录 | 第39-40页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
| 综述 | 第41-46页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
