| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第11-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-15页 |
| 第2章 实验方法与材料 | 第15-31页 |
| 2.1 同源建模简介 | 第15-16页 |
| 2.1.1 同源建模步骤 | 第15-16页 |
| 2.1.2 同源建模网站介绍 | 第16页 |
| 2.2 同源建模获得目标蛋白结构文件 | 第16-17页 |
| 2.2.1 目标蛋白一级序列及模板蛋白结构文件获得 | 第16页 |
| 2.2.2 目标蛋白的模建、优化及检验 | 第16-17页 |
| 2.3 分子对接简介 | 第17-18页 |
| 2.3.1 分子对接 | 第17页 |
| 2.3.2 分子对接原理 | 第17-18页 |
| 2.3.3 分子对接的步骤 | 第18页 |
| 2.3.4 分子对接分类 | 第18页 |
| 2.4 分子对接方法预测药物作用 | 第18-19页 |
| 2.4.1 分子预处理 | 第18-19页 |
| 2.4.2 对接处理 | 第19页 |
| 2.5 动物实验材料 | 第19-24页 |
| 2.5.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.5.2 实验试剂 | 第19-21页 |
| 2.5.3 实验仪器 | 第21页 |
| 2.5.4 溶液配制 | 第21-24页 |
| 2.6 动物实验方法 | 第24-31页 |
| 2.6.1 建立糖尿病大鼠模型 | 第24-25页 |
| 2.6.2 大鼠血糖测定 | 第25页 |
| 2.6.3 大鼠血压、心率及心率变异性测定 | 第25页 |
| 2.6.4 逆转录-聚合酶链式反应（RT-PCR） | 第25-27页 |
| 2.6.5 免疫组织化学方法 | 第27-28页 |
| 2.6.6 蛋白印迹 | 第28-29页 |
| 2.6.7 全细胞膜片钳方法 | 第29-30页 |
| 2.6.8 统计学方法 | 第30-31页 |
| 第3章 结果 | 第31-47页 |
| 3.1 同源建模结果 | 第31-33页 |
| 3.1.1 P2X_2和 P2X_3模型三维结构图 | 第31页 |
| 3.1.2 P2X_2和 P2X_3模型 PROCHECK 评价结果 | 第31-32页 |
| 3.1.3 P2X_2和 P2X_3模型通过 Chiron 优化 | 第32-33页 |
| 3.2 分子对接结果 | 第33-35页 |
| 3.2.1 P2X_2受体与青藤碱对接结果 | 第33-34页 |
| 3.2.2 P2X_3受体与青藤碱对接结果 | 第34-35页 |
| 3.3 血糖结果 | 第35-36页 |
| 3.4 血压、心率及心率变异性的变化 | 第36-39页 |
| 3.4.1 血压变化 | 第36-37页 |
| 3.4.2 心率变化 | 第37-38页 |
| 3.4.3 心率变异性的变化 | 第38-39页 |
| 3.5 RT-PCR 结果 | 第39-41页 |
| 3.5.1 P2X_2受体 mRNA 变化 | 第39-40页 |
| 3.5.2 P2X_3受体 mRNA 变化 | 第40-41页 |
| 3.6 免疫组化 | 第41-42页 |
| 3.6.1 P2X_2免疫反应性变化 | 第41页 |
| 3.6.2 P2X_3受体免疫反应性变化 | 第41-42页 |
| 3.7 蛋白印迹 | 第42-44页 |
| 3.7.1 P2X_2蛋白变化 | 第42-43页 |
| 3.7.2 P2X_3蛋白变化 | 第43-44页 |
| 3.8 全细胞膜片钳实验结果 | 第44-47页 |
| 第4章 讨论 | 第47-50页 |
| 第5章 结论 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第56-57页 |
| 综述 | 第57-65页 |
| 参考文献 | 第64-65页 |
