| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1. 绪论 | 第9-27页 |
| 1.1 研究背景和意义 | 第9-10页 |
| 1.1.1 N_2O 的危害 | 第9页 |
| 1.1.2 N_2O 释放来源 | 第9-10页 |
| 1.2 污水生物脱氮过程中 N_2O 的释放 | 第10-17页 |
| 1.2.1 污水生物脱氮过程中 N_2O 的释放机理 | 第10-12页 |
| 1.2.2 产生 N_2O 的污水生物脱氮新工艺 | 第12-14页 |
| 1.2.3 污水生物脱氮过程中 N_2O 释放的影响因素 | 第14-17页 |
| 1.3 生物脱氮的酶学特征 | 第17-23页 |
| 1.3.1 硝化过程中的酶 | 第17-19页 |
| 1.3.2 反硝化过程中的酶 | 第19-20页 |
| 1.3.3 酶活性提取与测定 | 第20-23页 |
| 1.4 课题背景与研究意义 | 第23-27页 |
| 1.4.1 课题来源 | 第23页 |
| 1.4.2 课题研究的背景及目的 | 第23-24页 |
| 1.4.3 本课题研究内容 | 第24-27页 |
| 2.实验材料与方法 | 第27-31页 |
| 2.1 试验装置 | 第27页 |
| 2.2 实验废水与接种污泥 | 第27-28页 |
| 2.3 分析方法 | 第28-31页 |
| 2.3.1 常规水质指标 | 第28-29页 |
| 2.3.2 N_2O 收集、测定及计算方法 | 第29-30页 |
| 2.3.3 HAO 粗酶液的提取与活性测定 | 第30-31页 |
| 3.HAO 粗提取及活性测定的方法优化 | 第31-41页 |
| 3.1 取样点及污泥预处理 | 第31页 |
| 3.2 HAO 酶活性测定方法的选定 | 第31-34页 |
| 3.2.1 酶活性测定反应液的配比 | 第31-32页 |
| 3.2.2 反应环境 | 第32-33页 |
| 3.2.3 反应终止剂 | 第33-34页 |
| 3.3 粗酶提取方法的选定 | 第34-36页 |
| 3.3.1 是否加裂解液 | 第34-35页 |
| 3.3.2 细胞破碎次数与加细胞裂解液体积的比较 | 第35-36页 |
| 3.4 HAO 活性与总蛋白质含量、细胞破碎率之间的关系 | 第36-38页 |
| 3.5 小结 | 第38-41页 |
| 4.不同运行条件下系统对污染物的去除及 N_2O 产生情况 | 第41-51页 |
| 4.1 污泥特性及污染物的去除特性 | 第41-43页 |
| 4.1.1 典型周期各阶段的作用分析 | 第41-42页 |
| 4.1.2 污泥性状指标及污染物去除特性 | 第42-43页 |
| 4.2 不同曝气量下典型周期内 DO 与 ORP 的变化 | 第43-45页 |
| 4.3 不同曝气强度下 COD 与氮素的变化 | 第45-48页 |
| 4.3.1 不同曝气量下典型周期内 COD 的变化情况 | 第45页 |
| 4.3.2 不同曝气强度下典型周期内氮素的变化情况 | 第45-48页 |
| 4.4 不同曝气量下典型周期内释放的 N_2O 量 | 第48-50页 |
| 4.5 小结 | 第50-51页 |
| 5.不同条件下污泥 HAO 活性与 N_2O 释放量的变化 | 第51-57页 |
| 5.1 不同曝气量下典型周期内释放的 N_2O 量与 HAO 的活性变化 | 第51-55页 |
| 5.2 不同曝气强度下硝化阶段污泥 HAO 活性的比较 | 第55页 |
| 5.3 小结 | 第55-57页 |
| 6. 结论 | 第57-59页 |
| 6.1 结论 | 第57-58页 |
| 6.2 建议 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 附录 攻读硕士学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第69页 |
