| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第11页 |
| 1.2 血管支架研究现状 | 第11-17页 |
| 1.2.1 血管支架的性能要求 | 第12-13页 |
| 1.2.2 不可降解血管支架 | 第13-14页 |
| 1.2.3 可降解血管支架 | 第14-17页 |
| 1.3 镁支架的体内研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4 血管狭窄模型 | 第18-20页 |
| 1.4.1 血管狭窄模型建立 | 第18-19页 |
| 1.4.2 血管狭窄模型狭窄程度的检测 | 第19-20页 |
| 1.5 本文研究目的、主要内容及技术路线 | 第20-22页 |
| 1.5.1 研究意义和目的 | 第20页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第21-22页 |
| 第2章 AZ31镁合金支架准备 | 第22-26页 |
| 2.1 引言 | 第22-23页 |
| 2.2 实验材料及仪器 | 第23页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第23页 |
| 2.2.2 实验耗材 | 第23页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第23页 |
| 2.3 实验步骤 | 第23-24页 |
| 2.3.1 AZ31镁合金支架的形貌表征 | 第23页 |
| 2.3.2 AZ31镁合金支架的清洗及灭菌 | 第23-24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-25页 |
| 2.4.1 AZ31镁合金的形貌 | 第24-25页 |
| 2.4.2 AZ31镁合金的晶粒尺寸 | 第25页 |
| 2.5 本章小结 | 第25-26页 |
| 第3章 构建新西兰大白兔髂动脉狭窄模型 | 第26-38页 |
| 3.1 引言 | 第26页 |
| 3.2 实验材料及仪器 | 第26-27页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第26页 |
| 3.2.2 实验耗材 | 第26页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第26-27页 |
| 3.3 实验步骤 | 第27-32页 |
| 3.3.1 实验前准备 | 第27页 |
| 3.3.2 构建兔子髂动脉狭窄模型 | 第27-30页 |
| 3.3.3 建模后髂动脉的组织学评价 | 第30-32页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第32-37页 |
| 3.4.1 H&E染色结果 | 第32-33页 |
| 3.4.2 油红O染色结果 | 第33-34页 |
| 3.4.3 茜素红染色结果 | 第34页 |
| 3.4.4 CD31&α-SMA结果 | 第34-35页 |
| 3.4.5 iNOS结果 | 第35-37页 |
| 3.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第4章 AZ31镁合金支架在兔髂动脉狭窄模型和健康模型中的细胞响应 | 第38-61页 |
| 4.1 引言 | 第38页 |
| 4.2 实验材料和实验步骤 | 第38-39页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第38-39页 |
| 4.2.2 实验耗材 | 第39页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第39页 |
| 4.3 实验内容 | 第39-45页 |
| 4.3.1 实验前准备 | 第39-40页 |
| 4.3.2 AZ31镁合金支架植入狭窄模型和健康模型 | 第40-43页 |
| 4.3.3 组织学染色 | 第43-44页 |
| 4.3.4 免疫荧光染色 | 第44-45页 |
| 4.3.5 SEM与EDS面扫描 | 第45页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第45-59页 |
| 4.4.1 内膜增生 | 第45-47页 |
| 4.4.2 内皮化 | 第47-48页 |
| 4.4.3 再狭窄 | 第48-52页 |
| 4.4.4 钙化现象 | 第52-55页 |
| 4.4.5 炎症反应 | 第55-57页 |
| 4.4.6 AZ31镁合金支架的降解产物 | 第57-59页 |
| 4.5 本章小结 | 第59-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第71页 |