| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1. 耐除草剂转基因作物研究进展 | 第10-11页 |
| 2. 2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-dichlorophenoxyacetic acid, 2,4-D) | 第11-15页 |
| 3. TfdA基因研究进展 | 第15-17页 |
| 3.1 TfdA基因简介 | 第15-16页 |
| 3.2 转TfdA基因作物研究进展 | 第16-17页 |
| 4. 烟草基因工程 | 第17-18页 |
| 5. 黑麦草基因工程 | 第18-19页 |
| 6. 研究的目的及意义 | 第19-21页 |
| 第二章 除草剂 2,4-D降解基因TfdA对烟草的遗传转化 | 第21-32页 |
| 1. 前言 | 第21页 |
| 2. 材料和方法 | 第21-24页 |
| 2.1 植物材料 | 第21页 |
| 2.2 菌株与质粒 | 第21-22页 |
| 2.3 培养基及培养条件 | 第22页 |
| 2.4 研究方法 | 第22-24页 |
| 2.4.1 农杆菌的培养和活化 | 第22页 |
| 2.4.2 农杆菌介导的烟草遗传转化 | 第22-23页 |
| 2.4.3 转基因植株的鉴定 | 第23页 |
| 2.4.4 转TfdA基因烟草植株的叶绿素含量及 2,4-D抗性检测 | 第23-24页 |
| 2.4.5 转TfdA基因烟草的光合特性研究 | 第24页 |
| 3. 结果与分析 | 第24-30页 |
| 3.1 农杆菌介导法遗传转化烟草及抗性植株的获得 | 第24页 |
| 3.2 GUS染色与PCR检测转基因烟草植株 | 第24-25页 |
| 3.3 转TfdA基因烟草的 2,4-D抗性 | 第25-27页 |
| 3.4 除草剂 2,4-D对烟草叶绿素含量的影响 | 第27页 |
| 3.5 转TfdA基因烟草的光合特性 | 第27-30页 |
| 4. 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 除草剂 2,4-D降解基因TfdA对黑麦草的遗传转化 | 第32-50页 |
| 1. 前言 | 第32页 |
| 2. 材料与方法 | 第32-38页 |
| 2.1 植物材料 | 第32页 |
| 2.2 菌株与质粒 | 第32-33页 |
| 2.3 主要仪器和试剂 | 第33页 |
| 2.4 主要培养基 | 第33-34页 |
| 2.5 研究方法 | 第34-38页 |
| 2.5.1 农杆菌重悬液的制备 | 第34页 |
| 2.5.2 建立农杆菌介导的黑麦草愈伤组织遗传转化体系 | 第34-35页 |
| 2.5.3 建立农杆菌介导的黑麦草茎尖遗传转化体系 | 第35-36页 |
| 2.5.4 农杆菌介导的黑麦草愈伤组织转化 | 第36页 |
| 2.5.5 农杆菌介导的黑麦草茎尖转化 | 第36页 |
| 2.5.6 转基因植株的鉴定 | 第36-37页 |
| 2.5.7 转TfdA基因黑麦草的 2,4-D抗性检测 | 第37-38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-47页 |
| 3.1 不同因素对农杆菌介导的黑麦草愈伤组织转化的影响 | 第38-40页 |
| 3.2 不同因素对农杆菌介导的黑麦草茎尖转化的影响 | 第40-42页 |
| 3.3 农杆菌介导法遗传转化黑麦草愈伤组织及抗性植株筛选 | 第42-43页 |
| 3.4 农杆菌介导法遗传转化黑麦草茎尖及抗性植株筛选 | 第43页 |
| 3.5 转化植株的GUS检测 | 第43-44页 |
| 3.6 TfdA基因的PCR检测 | 第44-45页 |
| 3.7 转TfdA基因黑麦草的 2,4-D抗性 | 第45-47页 |
| 4. 讨论 | 第47-50页 |
| 第四章 结论、创新与展望 | 第50-52页 |
| 1. 结论 | 第50-51页 |
| 2. 创新 | 第51页 |
| 3. 展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 缩略词 | 第60-62页 |
| 附录Ⅰ | 第62-64页 |
| 附录Ⅱ | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
