| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 符号说明 | 第14-15页 |
| 第1章 苔类植物次级代谢产物的抗真菌活性(综述) | 第15-28页 |
| 1.1 抗真菌机制 | 第16-18页 |
| 1.1.1 对真菌细胞壁的损害作用 | 第16-17页 |
| 1.1.2 对真菌细胞膜的损害作用 | 第17页 |
| 1.1.3 影响真菌蛋白质生物合成 | 第17-18页 |
| 1.1.4 对真菌核酸合成和功能的影响 | 第18页 |
| 1.2 苔类植物中具有抗真菌活性的次级代谢产物 | 第18-22页 |
| 1.2.1 倍半萜 | 第18-19页 |
| 1.2.2 二萜 | 第19-20页 |
| 1.2.3 联苄 | 第20-21页 |
| 1.2.4 其他类型 | 第21-22页 |
| 1.3 结语 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-28页 |
| 第二章 密叶三瓣苔化学成分及抗真菌活性研究 | 第28-61页 |
| 2.1 前言 | 第28-31页 |
| 2.2 新化合物的结构鉴定 | 第31-36页 |
| 2.3 已知化合物的结构确定 | 第36-41页 |
| 2.4 生物自显影定位活性化合物 | 第41页 |
| 2.5 药敏试验 | 第41-42页 |
| 2.6 ent-iLL抑制白色念珠菌酵母菌丝的形成 | 第42-43页 |
| 2.7 当外排泵被抑制时ent-iLL在细胞内累积 | 第43-44页 |
| 2.8 ent-iLL通过抑制Erg11和Erg6的活动来改变膜甾醇的组成 | 第44-47页 |
| 2.9 实验部分 | 第47-53页 |
| 2.9.1 苔藓的采集与鉴定 | 第47页 |
| 2.9.2 测试仪器 | 第47页 |
| 2.9.3 溶剂和试剂 | 第47-48页 |
| 2.9.4 层析系统和显色剂 | 第48页 |
| 2.9.5 提取分离流程 | 第48-49页 |
| 2.9.6 化合物7,8,11的X射线单晶衍射 | 第49-50页 |
| 2.9.7 菌种及培养条件 | 第50页 |
| 2.9.8 TLC-生物自显影实验 | 第50-51页 |
| 2.9.9 利用Alamar blue染色法测定最小抑菌浓度(MICs) | 第51页 |
| 2.9.10 化合物在抑制C.albicans菌丝形成中的作用 | 第51页 |
| 2.9.11 HPLC测定化合物胞内累积量 | 第51-52页 |
| 2.9.12 GC-MS联用测定甾醇类物质的含量 | 第52页 |
| 2.9.13 qPCR分析 | 第52-53页 |
| 2.9.14 统计分析 | 第53页 |
| 2.10 新化合物的理化性质 | 第53-54页 |
| 2.11 总结与讨论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 第三章 指叶苔化学成分及抗炎活性研究 | 第61-91页 |
| 3.1 前言 | 第61-64页 |
| 3.2 新化合物的结构鉴定 | 第64-71页 |
| 3.3 已知化合物的结构确定 | 第71-76页 |
| 3.4 LPS诱导产生NO测试化合物的抗炎作用 | 第76页 |
| 3.5 化合物1和2抑制LPS诱导的IL-6,IL-β,IL-α和TNF-α的表达 | 第76-77页 |
| 3.6 化合物1和2抑制LPS诱发的NF-κB和TFE3的激活 | 第77-80页 |
| 3.7 实验部分 | 第80-84页 |
| 3.7.1 苔藓的采集与鉴定 | 第80页 |
| 3.7.2 测试仪器 | 第80页 |
| 3.7.3 溶剂和试剂 | 第80页 |
| 3.7.4 层析系统和显色剂 | 第80页 |
| 3.7.5 提取分离流程 | 第80-81页 |
| 3.7.6 化合物1,2的X射线单晶衍射 | 第81-82页 |
| 3.7.7 细胞培养及处理 | 第82页 |
| 3.7.8 NO 产量的测量 | 第82-83页 |
| 3.7.9 细胞存活率实验 | 第83页 |
| 3.7.10 实时定量PCR | 第83页 |
| 3.7.11 免疫印迹实验 | 第83-84页 |
| 3.7.12 免疫荧光实验 | 第84页 |
| 3.7.13 统计分析 | 第84页 |
| 3.8 新化合物的理化性质 | 第84-85页 |
| 3.9 总结与讨论 | 第85页 |
| 参考文献 | 第85-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 发表文章目录 | 第92-93页 |
| 附录Ⅰ 苔藓照片 | 第93-94页 |
| 附录Ⅱ 补充信息 | 第94-144页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第144页 |
