| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 缩写名词表 | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第9-18页 |
| 1.1 油菜遗传转化研究进展 | 第9-10页 |
| 1.1.1 农杆菌介导遗传转化体系 | 第9-10页 |
| 1.1.2 外源基因的遗传表达 | 第10页 |
| 1.1.3 近年来遗传转化的进展 | 第10页 |
| 1.2 磷脂酶基因 | 第10-17页 |
| 1.2.1 PLD简述 | 第10-12页 |
| 1.2.2 PLD的水解产物PA是重要的信号分子 | 第12-13页 |
| 1.2.3 PLD参与植物细胞内的信号转导 | 第13-14页 |
| 1.2.4 PLD在胁迫应答中的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.5 PLD研究展望 | 第16-17页 |
| 1.3 研究目标 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-33页 |
| 2.1 转基因植株的获得 | 第18-31页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18页 |
| 2.1.3 基因和载体信息 | 第18-19页 |
| 2.1.4 细菌培养基 | 第19页 |
| 2.1.5 植物培养基 | 第19-20页 |
| 2.1.6 PCR反应体系 | 第20-21页 |
| 2.1.7 引物序列 | 第21-22页 |
| 2.1.8 转化菌株的准备 | 第22-23页 |
| 2.1.9 农杆菌介导油菜遗传转化 | 第23-25页 |
| 2.1.10 转化苗鉴定 | 第25-31页 |
| 2.2 T_1代阳性植株的水培胁迫实验 | 第31-33页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第31页 |
| 2.2.2 水培营养液 | 第31-32页 |
| 2.2.3 水培实验设计 | 第32-33页 |
| 2.2.4 胁迫实验方案 | 第33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-43页 |
| 3.1 T_0代转化苗DNA鉴定 | 第33-34页 |
| 3.2 ATPLDγ3-OE T_0代转化苗的进一步鉴定 | 第34-35页 |
| 3.3 T_1代转化苗的DNA鉴定 | 第35页 |
| 3.4 ATPLDβ1-OE T_1代转化苗的进一步鉴定 | 第35-36页 |
| 3.5 T_1代转化植株在不同处理下芽长和根长比较 | 第36-39页 |
| 3.6 水培胁迫实验T_1代转化植株表型分析 | 第39-43页 |
| 3.6.1 侧根生长受抑制 | 第39-41页 |
| 3.6.2 多子叶 | 第41-42页 |
| 3.6.3 子叶印迹缺刻 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 4.1 油菜品种对于农杆菌介导遗传转化体系的影响 | 第43页 |
| 4.2 PLD基因与根的发育 | 第43-44页 |
| 4.3 子叶异型出现的可能成因 | 第44-45页 |
| 4.4 本研究的特色及不足 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
