| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 第一章 综述 | 第11-27页 |
| 1.1 雷公藤简介 | 第11-16页 |
| 1.1.1 化学成分 | 第11-14页 |
| 1.1.2 药理作用 | 第14页 |
| 1.1.3 毒副反应 | 第14-15页 |
| 1.1.4 临床作用 | 第15页 |
| 1.1.5 制剂研究 | 第15-16页 |
| 1.2 雷公藤内酯醇及其衍生物 | 第16-19页 |
| 1.2.1 雷公藤内酯醇的来源 | 第16-17页 |
| 1.2.2 雷公藤内酯醇的化学改造研究 | 第17-19页 |
| 1.2.3 雷公藤内酯醇其它方面的研究 | 第19页 |
| 1.3 14-脱羟基-14-亚甲基雷公藤内酯醇简介 | 第19-21页 |
| 1.4 生物转化综述 | 第21-25页 |
| 1.4.1 生物转化在天然药物合成中的应用 | 第22-25页 |
| 1.5 立题依据 | 第25-27页 |
| 第二章 14-脱羟基-14-亚甲基雷公藤内酯醇(T-144)的微生物转化研究 | 第27-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第27-28页 |
| 2.1.1 仪器 | 第27页 |
| 2.1.2 材料 | 第27-28页 |
| 2.1.3 (高效液相色谱)HPLC对样品的分析 | 第28页 |
| 2.2 转化14-脱羟基-14-亚甲基雷公藤内酯醇(T-144)的微生物的筛选 | 第28-36页 |
| 2.2.1 预实验 | 第28-29页 |
| 2.2.2 发酵液处理 | 第29页 |
| 2.2.3 结果与分析 | 第29-36页 |
| 2.3 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 T-144的微生物转化条件优化 | 第37-51页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第37页 |
| 3.1.1 仪器 | 第37页 |
| 3.1.2 材料 | 第37页 |
| 3.1.3 HPLC对样品的分析 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 发酵滤液对T-144的生物转化的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.2 不同溶剂溶解底物后对转化的影响 | 第38页 |
| 3.2.3 不同温度对转化的影响 | 第38页 |
| 3.2.4 最佳转化条件下转化液中pH的变化 | 第38-39页 |
| 3.2.5 最佳转化条件下转化液中各组分的变化 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-50页 |
| 3.3.1 发酵滤液对T-144的生物转化的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.2 不同溶剂溶解底物后对转化的影响 | 第40-42页 |
| 3.3.3 不同温度对转化的影响 | 第42-46页 |
| 3.3.4 最佳转化条件下转化液中pH的变化 | 第46-47页 |
| 3.3.5 最佳转化条件下转化液中各组分变化 | 第47-50页 |
| 3.4 本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 T-144生物转化产物的分离纯化及结构验证 | 第51-63页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第51-52页 |
| 4.1.1 仪器 | 第51-52页 |
| 4.1.2 材料 | 第52页 |
| 4.2 实验方法 | 第52-53页 |
| 4.2.1 粗提物的制备 | 第52页 |
| 4.2.2 硅胶柱初分离 | 第52页 |
| 4.2.3 制备分离转化产物 | 第52-53页 |
| 4.3 结果与分析 | 第53-61页 |
| 4.3.1 硅胶柱初分离 | 第53-54页 |
| 4.3.2 高效液相制备条件优化 | 第54-57页 |
| 4.3.3 经制备液相分离后三种转化产物的HPLC和NMR图谱分析 | 第57-61页 |
| 4.4 本章小结 | 第61-63页 |
| 全文讨论 | 第63-65页 |
| 全文总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录 | 第73-79页 |
| 攻读硕士学位期间发表的专利 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
