| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-26页 |
| 1.1 类胡萝卜素 | 第12-21页 |
| 1.1.1 天然类胡萝卜素 | 第12-13页 |
| 1.1.2 类胡萝卜素的结构 | 第13-16页 |
| 1.1.3 类胡萝卜素的合成 | 第16-21页 |
| 1.2 耐盐杜氏藻类胡萝卜素的生物合成调控 | 第21-24页 |
| 1.2.1 杜氏藻 | 第21-22页 |
| 1.2.2 杜氏藻的耐盐机制 | 第22-23页 |
| 1.2.3 杜氏藻类胡萝卜素的生物合成调控 | 第23-24页 |
| 1.3 本论文的研究内容与意义 | 第24-26页 |
| 第二章 PSY 启动子的克隆与活性验证、调控元件分析及盐胁迫表达 | 第26-70页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第26-30页 |
| 2.2.1 藻种 | 第26页 |
| 2.2.2 培养基 | 第26页 |
| 2.2.3 菌种和质粒 | 第26-27页 |
| 2.2.4 试剂及试剂盒 | 第27-28页 |
| 2.2.5 试剂配制 | 第28-29页 |
| 2.2.6 实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-51页 |
| 2.3.1 巴氏藻的培养 | 第30页 |
| 2.3.2 Dbpsy mRNA 序列的验证 | 第30-35页 |
| 2.3.3 Dbpsy 启动子与终止子的克隆 | 第35-39页 |
| 2.3.4 目的条带的回收、克隆、转化与测序 | 第39-42页 |
| 2.3.5 Dbpsy 启动子的活性验证 | 第42-49页 |
| 2.3.6 盐胁迫对 Dbpsy 转录水平的影响 | 第49-51页 |
| 2.3.7 序列分析 | 第51页 |
| 2.4 实验结果与分析讨论 | 第51-68页 |
| 2.4.1 Dbpsy 模板验证 | 第51-54页 |
| 2.4.2 Dbpsy 启动子与终止子的分离 | 第54-58页 |
| 2.4.3 Dbpsy 启动子活性验证 | 第58-61页 |
| 2.4.4 Dbpsy 启动子调控元件的信息学分析 | 第61-64页 |
| 2.4.5 Dbpsy 的转录水平分析 | 第64-68页 |
| 2.5 本章小结 | 第68-70页 |
| 第三章 PDS 启动子的克隆与活性验证、调控元件分析及盐胁迫表达 | 第70-99页 |
| 3.1 前言 | 第70页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第70-72页 |
| 3.2.1 藻种 | 第70页 |
| 3.2.2 培养基 | 第70页 |
| 3.2.3 菌种和质粒 | 第70-71页 |
| 3.2.4 试剂及试剂盒 | 第71页 |
| 3.2.5 试剂配制 | 第71页 |
| 3.2.6 实验仪器 | 第71-72页 |
| 3.3 实验方法 | 第72-82页 |
| 3.3.1 巴氏藻培养 | 第72页 |
| 3.3.2 Dbpds 基因序列的克隆与验证 | 第72-77页 |
| 3.3.3 Dbpds 启动子与终止子的克隆 | 第77页 |
| 3.3.4 目的条带的回收、克隆、转化与测序 | 第77-78页 |
| 3.3.5 Dbpds 启动子的活性验证 | 第78-81页 |
| 3.3.6 盐胁迫对 Dbpds 转录水平的影响 | 第81-82页 |
| 3.3.7 序列分析 | 第82页 |
| 3.4 实验结果与分析讨论 | 第82-97页 |
| 3.4.1 Dbpds 基因序列的克隆与验证 | 第82-84页 |
| 3.4.2 序列分析 | 第84-88页 |
| 3.4.3 Dbpds 基因启动子与终止子的获得 | 第88-90页 |
| 3.4.4 Dbpds 启动子活性验证 | 第90-94页 |
| 3.4.5 Dbpds 启动子调控元件的信息学分析 | 第94页 |
| 3.4.6 Dbpds 的转录水平分析 | 第94-97页 |
| 3.5 本章小结 | 第97-99页 |
| 第四章 ZDS 启动子的克隆、盐胁迫表达分析及低渗透元件鉴定 | 第99-133页 |
| 4.1 前言 | 第99页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第99-100页 |
| 4.2.1 藻种 | 第99-100页 |
| 4.2.2 培养基 | 第100页 |
| 4.2.3 菌种和质粒 | 第100页 |
| 4.2.4 试剂及试剂盒 | 第100页 |
| 4.2.5 试剂配制 | 第100页 |
| 4.2.6 实验仪器 | 第100页 |
| 4.3 实验方法 | 第100-114页 |
| 4.3.1 巴氏藻培养 | 第100-101页 |
| 4.3.2 Dbzds 基因序列的克隆 | 第101-104页 |
| 4.3.3 Dbzds 启动子与终止子的克隆 | 第104页 |
| 4.3.4 目的条带的回收、克隆、转化与测序 | 第104-105页 |
| 4.3.5 Dbzds 启动子的活性验证 | 第105-108页 |
| 4.3.6 低渗应答元件的功能验证 | 第108-113页 |
| 4.3.7 盐胁迫对 crts 转录水平的影响 | 第113页 |
| 4.3.8 序列分析 | 第113-114页 |
| 4.4 实验结果与分析讨论 | 第114-131页 |
| 4.4.1 Dbzds 基因结构分析 | 第114-115页 |
| 4.4.2 Dbzds 启动子与终止子的分离 | 第115-116页 |
| 4.4.3 Dbzds 启动子活性验证 | 第116-121页 |
| 4.4.4 Dbzds 启动子调控元件的信息学分析 | 第121-122页 |
| 4.4.5 低渗应答元件的盐胁迫表达分析 | 第122-128页 |
| 4.4.6 Dbzds 与其他 crts 的调控机制分析讨论 | 第128-131页 |
| 4.5 本章小结 | 第131-133页 |
| 第五章 LYC-B1 启动子的克隆、活性验证及盐胁迫元件鉴定 | 第133-163页 |
| 5.1 前言 | 第133页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第133-134页 |
| 5.2.1 藻种 | 第133页 |
| 5.2.2 培养基 | 第133-134页 |
| 5.2.3 菌种和质粒 | 第134页 |
| 5.2.4 试剂及试剂盒 | 第134页 |
| 5.2.5 试剂配制 | 第134页 |
| 5.2.6 实验仪器 | 第134页 |
| 5.3 实验方法 | 第134-143页 |
| 5.3.1 巴氏藻培养 | 第134页 |
| 5.3.2 DblycB1 基因序列的克隆 | 第134-135页 |
| 5.3.3 DblycB1 启动子与终止子的克隆 | 第135-137页 |
| 5.3.4 目的条带的回收、克隆、转化与测序 | 第137页 |
| 5.3.5 DblycB1 启动子的活性验证 | 第137-140页 |
| 5.3.6 盐调控元件的功能验证 | 第140-142页 |
| 5.3.7 盐胁迫对 DblycB 平行同源基因的转录影响 | 第142-143页 |
| 5.3.8 序列分析 | 第143页 |
| 5.4 实验结果与分析讨论 | 第143-161页 |
| 5.4.1 DblycB1 基因结构分析 | 第143-146页 |
| 5.4.2 DblycB1 启动子与终止子的分离 | 第146页 |
| 5.4.3 DblycB1 启动子活性验证 | 第146-152页 |
| 5.4.4 DblycB1 启动子调控元件的信息学分析 | 第152-153页 |
| 5.4.5 低渗应答元件的盐胁迫表达分析 | 第153-159页 |
| 5.4.6 DblycB1 和 DblycB2 的表达分析比较 | 第159-161页 |
| 5.5 本章小结 | 第161-163页 |
| 结论与展望 | 第163-168页 |
| 参考文献 | 第168-184页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第184-186页 |
| 致谢 | 第186-187页 |
| 附件 | 第187页 |
