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奶山羊卵巢颗粒细胞中TIMP3基因的表达调控及功能研究

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-10页
文献综述第15-34页
    第一章 LH调节基因表达的信号通路研究进展第15-22页
        1.1 引言第15页
        1.2 LH诱导的信号转导通路第15-22页
            1.2.1 cAMP/PKA和MAPK信号通路第15-17页
            1.2.2 PKC信号通路第17-18页
            1.2.3 PI3K/Akt信号通路第18页
            1.2.4 EGFR信号通路第18-20页
            1.2.5 LH通过信号通路诱导基因表达的研究进展第20-22页
    第二章 TIMP3基因研究进展第22-34页
        2.1 引言第22页
        2.2 基质金属蛋白酶(MMPS)和基质蛋白酶组织抑制因子(TIMPS)第22-24页
            2.2.1 MMPs第22-23页
            2.2.2 TIMPs第23-24页
        2.3 TIMP3的结构第24-25页
        2.4 TIMP3基因的组织表达谱分析第25页
        2.5 TIMP3的表达调控第25-30页
            2.5.1 激素对TIMP3表达的调节第25-27页
            2.5.2 细胞或生长因子对TIMP3表达的调节第27页
            2.5.3 miRNA对TIMP3表达的调节第27-30页
        2.6 TIMP3的生物学功能第30-32页
            2.6.1 TIMP3对细胞凋亡的作用第30-31页
            2.6.2 TIMP3对血管生成的影响第31页
            2.6.3 TIMP3与组织重塑和疾病的关系第31页
            2.6.4 TIMP3对肿瘤的抑制作用第31-32页
        2.7 本研究的目的和意义第32-34页
试验研究第34-103页
    第三章 奶山羊TIMP3基因的克隆及表达分析第34-51页
        3.1 引言第34-35页
        3.2 材料与方法第35-42页
            3.2.1 试验动物第35页
            3.2.2 主要仪器设备第35页
            3.2.3 主要试剂第35页
            3.2.4 卵泡及卵泡细胞的分离第35-36页
            3.2.5 RNA提取和反转录第36-37页
            3.2.6 TIMP3基因全长cDNA的克隆及生物信息学分析第37-41页
            3.2.7 Real-time PCR分析第41页
            3.2.8 免疫组织化学分析第41-42页
            3.2.9 统计学分析第42页
        3.3 结果与分析第42-48页
            3.3.1 提取的奶山羊总RNA检测第42页
            3.3.2 TIMP3 mRNA序列的克隆及生物信息学分析第42-46页
            3.3.3 TIMP3在山羊各组织中的表达分析第46页
            3.3.4 TIMP3在不同产羔数奶山羊卵巢中的表达分析第46-47页
            3.3.5 TIMP3在不同大小卵泡及卵泡细胞中的表达分析第47-48页
        3.4 讨论第48-49页
        3.5 小结第49-51页
    第四章 hCG对奶山羊卵巢颗粒细胞TIMP3表达调节的研究第51-74页
        4.1 引言第51-52页
        4.2 材料与方法第52-62页
            4.2.1 试验动物第52页
            4.2.2 仪器设备第52页
            4.2.3 主要试剂第52页
            4.2.4 奶山羊卵巢GCs的分离培养及鉴定第52-54页
            4.2.5 Western blot分析蛋白水平第54页
            4.2.6 奶山羊TIMP3启动子的克隆与生物信息学分析第54-55页
            4.2.7 奶山羊TIMP3启动子 5'缺失片段的克隆及载体构建第55-56页
            4.2.8 细胞转染及相对荧光素酶活性测定第56-57页
            4.2.9 TIMP3基因启动子转录因子结合位点突变分析。第57-58页
            4.2.10 核蛋白提取和电泳迁移率实验(EMSA)第58-60页
            4.2.11 染色质免疫共沉淀(ChIP)第60-61页
            4.2.12 pcDNA3.1 过表达载体构建及干扰siRNA的合成第61-62页
            4.2.13 统计学分析第62页
        4.3 结果与分析第62-72页
            4.3.1 奶山羊卵巢GCs的鉴定第62-63页
            4.3.2 hCG处理对奶山羊卵巢GCs中TIMP3表达的影响第63-64页
            4.3.3 hCG诱导的细胞信号通路对TIMP3表达的影响第64-65页
            4.3.4 TIMP3启动子的克隆与分析第65-66页
            4.3.5 TIMP3启动子不同大小片段的克隆及载体构建第66-67页
            4.3.6 TIMP3启动子活性分析第67-68页
            4.3.7 TIMP3启动子活性区转录因子结合位点突变分析第68-69页
            4.3.8 EMSA和ChIP鉴定转录因子结合第69页
            4.3.9 Sp1过表达载体构建第69-70页
            4.3.10 过表达和干扰效率验证第70-71页
            4.3.11 Sp1过表达和干扰对TIMP3的调节作用。第71-72页
        4.4 讨论第72-73页
        4.5 小结第73-74页
    第五章 miR-221/222,miR-21和miR-181b对奶山羊卵巢颗粒细胞中TIMP3表达调节的研究第74-88页
        5.1 引言第74-75页
        5.2 材料与方法第75-79页
            5.2.1 试验动物第75页
            5.2.2 仪器设备第75页
            5.2.3 主要试剂第75页
            5.2.4 奶山羊卵巢GCs的分离培养第75页
            5.2.5 奶山羊TIMP3基因 3'UTR区miRNA靶结合位点的预测第75-76页
            5.2.6 miRNA靶结合位点及位点突变双荧光素酶报告载体的构建第76-77页
            5.2.7 miRNA模拟物的化学合成第77-78页
            5.2.8 细胞转染和荧光素酶检测第78页
            5.2.9 Real-time PCR和Western Blot检测第78页
            5.2.10 细胞活力检测(MTT)第78-79页
            5.2.11 统计学分析第79页
        5.3 结果与分析第79-85页
            5.3.1 TIMP3基因 3’UTR区mi RNA靶位点的预测第79页
            5.3.2 双荧光素酶报告载体的构建第79-80页
            5.3.3 靶位点突变双荧光素酶报告载体的构建第80-82页
            5.3.4 荧光素酶活性检测第82-84页
            5.3.5 Real-time PCR和Western Blot检测miRNA对TIMP3 m RNA和蛋白水平的影响第84页
            5.3.6 miR-21,miR-221,miR-222和miR-181b对奶山羊卵巢GCs活力的影响第84-85页
        5.4 讨论第85-86页
        5.5 小结第86-88页
    第六章 TIMP3在奶山羊卵巢颗粒细胞中潜在功能研究第88-103页
        6.1 引言第88页
        6.2 材料与方法第88-95页
            6.2.1 试验动物第88-89页
            6.2.2 仪器设备第89页
            6.2.3 主要试剂第89页
            6.2.4 奶山羊卵巢GCs的分离培养第89页
            6.2.5 RNA提取和反转录第89页
            6.2.6 腺病毒介导的TIMP3过表达载体的构建第89-91页
            6.2.7 重组腺病毒的包装及纯化第91-92页
            6.2.8 重组腺病毒的扩增和滴度测定第92-93页
            6.2.9 TIMP3 siRNA的设计和合成第93页
            6.2.10 Real-time PCR和western blot蛋白水平检测第93页
            6.2.11 细胞活力和细胞凋亡检测第93-94页
            6.2.12 ELSIA检测孕酮浓度第94页
            6.2.13 统计学分析第94-95页
        6.3 结果与分析第95-100页
            6.3.1 重组腺病毒Ad-TIMP3的构建、包装及滴度测定第95页
            6.3.2 重组腺病毒介导的过表达效率验证第95-96页
            6.3.3 合成的TIMP3特异性siRNA干扰效率验证第96页
            6.3.4 重组腺病毒介导的TIMP3过表达对GCs活性及凋亡的影响第96-98页
            6.3.5 TIMP3下调对hCG诱导的孕酮合成及类固醇激素酶表达的影响第98-99页
            6.3.6 hCG处理对奶山羊卵巢GCs中ADAM7,DCN和FN表达的影响第99页
            6.3.7 TIMP3下调对奶山羊卵巢GCs中ADAM7,DCN和FN表达的影响第99-100页
        6.4 讨论第100-102页
        6.5 小结第102-103页
结论第103-104页
创新点第104-105页
进一步研究的问题第105-106页
参考文献第106-120页
缩略词第120-122页
致谢第122-123页
作者简介第123页

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