| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 本文部分缩略词及中英文对照表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 精原干细胞 | 第10-11页 |
| 1.2 精子发生 | 第11-13页 |
| 1.3 睾酮的产生和生物有效性 | 第13-14页 |
| 1.4 AR在睾丸组织中的表达特征 | 第14-15页 |
| 1.5 AR相关的信号通路 | 第15-17页 |
| 1.5.1 经典的睾酮信号通路 | 第15-16页 |
| 1.5.2 非经典的睾酮信号通路 | 第16-17页 |
| 1.6 精原干细胞的重要标志物——PLZF | 第17-18页 |
| 1.7 SSC微环境中重要的连接蛋白 | 第18-20页 |
| 1.8 本试验的研究目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 试验研究 | 第22-50页 |
| 2.1 前言 | 第23-24页 |
| 2.2 材料与方法 | 第24-34页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第24-27页 |
| 2.2.1.1 实验动物 | 第24页 |
| 2.2.1.2 主要试剂 | 第24页 |
| 2.2.1.3 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.2.1.4 相关溶液配制 | 第25-27页 |
| 2.2.1.5 siRNA序列 | 第27页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第27-34页 |
| 2.2.2.1 组织固定包埋 | 第27页 |
| 2.2.2.2 组织学 | 第27-28页 |
| 2.2.2.3 免疫组化实验 | 第28-29页 |
| 2.2.2.4 STO饲养层细胞的传代 | 第29页 |
| 2.2.2.5 STO饲养层的制备 | 第29-30页 |
| 2.2.2.6 精原干细胞分离纯化 | 第30页 |
| 2.2.2.7 精原干细胞的培养条件和方法 | 第30页 |
| 2.2.2.8 DHT、bicalutamide的添加 | 第30页 |
| 2.2.2.9 siRNA转染 | 第30-31页 |
| 2.2.2.10 Western blot分析 | 第31-32页 |
| 2.2.2.11 小鼠腹腔注射bicalutamide及BrdU | 第32页 |
| 2.2.2.12 小鼠睾丸组织的BrdU免疫荧光实验 | 第32-33页 |
| 2.2.2.13 细胞的免疫荧光实验 | 第33-34页 |
| 2.2.2.14 PLZF阳性细胞计数、小鼠体重计数分析的数学方法(标准差,t-检验) | 第34页 |
| 2.3 试验结果 | 第34-46页 |
| 2.3.1 不同年龄组小鼠睾丸中PLZF的表达 | 第34页 |
| 2.3.2 PLZF阳性细胞在发育过程中的表达变化规律 | 第34-35页 |
| 2.3.3 AR在小鼠睾丸发育过程中的表达特征 | 第35-36页 |
| 2.3.4 精原干细胞-体细胞体外共培养系统的构建 | 第36-39页 |
| 2.3.5 雄激素和拮抗剂对共培养体系中基因表达的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.6 β1-integrin作为一个潜在的信号分子能够调控PLZF表达 | 第40-42页 |
| 2.3.7 拮抗剂腹腔注射小鼠导致睾丸发育滞后 | 第42-43页 |
| 2.3.8 拮抗剂受体小鼠曲精小管内精子发生受阻 | 第43-44页 |
| 2.3.9 阻断雄激素形成的两层精原细胞为正在分化的精原细胞 | 第44-45页 |
| 2.3.10 阻断雄激素后对小鼠睾丸内基因表达的影响 | 第45-46页 |
| 2.4 讨论 | 第46-50页 |
| 参考文献 | 第50-60页 |
| 全文结论 | 第60-62页 |
| 创新点 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第66页 |
