| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-22页 |
| 1.1 花色苷研究进展 | 第14页 |
| 1.1.1 花色苷简介 | 第14页 |
| 1.1.2 酰化花色苷简介 | 第14页 |
| 1.2 唐古特白刺花色苷研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.1 唐古特白刺花色苷的结构 | 第15页 |
| 1.2.2 唐古特白刺花色苷的提取分离方法 | 第15页 |
| 1.2.3 唐古特白刺花色苷的分析方法 | 第15-16页 |
| 1.2.4 唐古特白刺花色苷的药理活性 | 第16页 |
| 1.3 黑果枸杞花色苷研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3.1 黑果枸杞花色苷的结构 | 第16页 |
| 1.3.2 黑果枸杞花色苷的提取分离方法 | 第16-17页 |
| 1.3.3 黑果枸杞花色苷的分析方法 | 第17页 |
| 1.3.4 黑果枸杞花色苷的药理活性 | 第17页 |
| 1.4 绿色化学 | 第17-19页 |
| 1.4.1 绿色提取溶剂 | 第18页 |
| 1.4.2 绿色分析化学 | 第18-19页 |
| 1.4.3 双水相提取技术 | 第19页 |
| 1.5 课题研究思路与方法 | 第19-20页 |
| 1.6 创新性与课题意义 | 第20-22页 |
| 第2章 唐古特白刺籽粕花色苷提取、鉴定及其绿色HPLC分析方法的建立 | 第22-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第22页 |
| 2.1.2 试剂与药品 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 花色苷的提取 | 第23页 |
| 2.2.2 总花色苷含量测定 | 第23页 |
| 2.2.3 总多酚含量测定 | 第23-24页 |
| 2.2.4 HPLC-MS分析花色苷 | 第24页 |
| 2.2.5 HPLC-DAD分析花色苷 | 第24页 |
| 2.2.6 自由基清除活性测定 | 第24-25页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-35页 |
| 2.3.1 模型拟合 | 第25-26页 |
| 2.3.2 响应面法优化提取工艺 | 第26-29页 |
| 2.3.3 花色苷成分结构鉴定 | 第29-30页 |
| 2.3.4 HPLC-DAD色谱条件优化 | 第30-33页 |
| 2.3.5 HPLC-DAD方法学考察 | 第33-34页 |
| 2.3.6 唐古特白刺籽粕提取物抗氧化活性 | 第34-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第3章 不同极性花色苷在双水相中分配行为与唐古特白刺和黑果枸杞花色苷提取工艺研究 | 第36-60页 |
| 3.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.1 材料 | 第36页 |
| 3.1.2 试剂与药品 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 相图制作 | 第37页 |
| 3.2.2 双水相提取花色苷 | 第37页 |
| 3.2.3 总花色苷与总糖含量测定 | 第37-38页 |
| 3.2.4 花色苷HPLC-ESI-MS/MS分析 | 第38页 |
| 3.2.5 花色苷HPLC-DAD分析 | 第38页 |
| 3.2.6 分配系数与分离度测定 | 第38-39页 |
| 3.2.7 花色苷样品的纯化 | 第39页 |
| 3.2.8 纯化的花色苷在双水相中的分配 | 第39页 |
| 3.2.9 数据分析 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-59页 |
| 3.3.1 相图 | 第39页 |
| 3.3.2 总花色苷在双水相中的分配行为 | 第39-40页 |
| 3.3.3 花色苷成分研究 | 第40-45页 |
| 3.3.4 花色苷在双水相中的分配行为与其极性关系研究 | 第45-48页 |
| 3.3.5 响应面法优化唐古特白刺花色苷双水相提取工艺 | 第48-56页 |
| 3.3.6 响应面法优化黑果枸杞花色苷双水相提取工艺 | 第56-59页 |
| 3.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第4章 唐古特白刺和黑果枸杞花色苷低共熔溶剂提取工艺研究及其绿色HPLC分析方法建立 | 第60-88页 |
| 4.1 实验材料 | 第61页 |
| 4.1.1 材料 | 第61页 |
| 4.1.2 试剂与药品 | 第61页 |
| 4.2 实验方法 | 第61-64页 |
| 4.2.1 低共熔溶剂制备 | 第61页 |
| 4.2.2 花色苷的提取 | 第61-62页 |
| 4.2.3 花色苷HPLC-DAD分析 | 第62页 |
| 4.2.4 花色苷分离纯化 | 第62-63页 |
| 4.2.5 花色苷UPLC-Q-TOF-MS分析 | 第63页 |
| 4.2.6 数据分析 | 第63-64页 |
| 4.3 结果与分析 | 第64-85页 |
| 4.3.1 唐古特白刺花色苷HPLC-DAD方法的建立 | 第64-66页 |
| 4.3.2 唐古特白刺花色苷HPLC-DAD方法学考察 | 第66-67页 |
| 4.3.3 黑果枸杞花色苷HPLC-DAD方法的建立 | 第67-69页 |
| 4.3.4 黑果枸杞花色苷HPLC-DAD方法学考察 | 第69页 |
| 4.3.5 提取溶剂对唐古特白刺花色苷得率的影响 | 第69-72页 |
| 4.3.6 提取溶剂对黑果枸杞花色苷得率的影响 | 第72页 |
| 4.3.7 唐古特白刺花色苷提取工艺优化 | 第72-75页 |
| 4.3.8 黑果枸杞花色苷提取工艺优化 | 第75-79页 |
| 4.3.9 唐古特白刺花色苷分离纯化 | 第79-80页 |
| 4.3.10 黑果枸杞花色苷分离纯化 | 第80-81页 |
| 4.3.11 唐古特白刺花色苷成分分析 | 第81-83页 |
| 4.3.12 黑果枸杞花色苷成分分析 | 第83-85页 |
| 4.4 本章小结 | 第85-88页 |
| 第5章 结论 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-102页 |
| 致谢 | 第102-104页 |
| 攻读学位期间科研成果 | 第104页 |
