中文摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-32页 |
1 植物病毒检测技术的研究进展 | 第10-12页 |
1.1 生物学检测法 | 第10页 |
1.2 电镜检测法 | 第10-11页 |
1.3 血清学检测 | 第11页 |
1.4 分子生物学检测 | 第11页 |
1.5 第二代测序(Next-generation sequencing,NGS)检测法 | 第11-12页 |
2 大豆花叶病毒(SMV) | 第12-17页 |
2.1 大豆花叶病毒的性质与寄主范围 | 第12-13页 |
2.2 大豆花叶病毒的症状 | 第13页 |
2.3 大豆花叶病毒株系的划分 | 第13-15页 |
2.4 SMV基因组结构及功能 | 第15-16页 |
2.5 重组型SMV的研究进展 | 第16-17页 |
3 大豆对SMV抗性的相关研究 | 第17-22页 |
3.1 栽培大豆对SMV抗性资源筛选研究 | 第17-18页 |
3.2 野生大豆对SMV抗性资源筛选研究 | 第18-19页 |
3.3 抗SMV基因位点的发现与定位的研究进展 | 第19-22页 |
4 本研究目的、意义及技术路线 | 第22-23页 |
4.1 本研究的目的意义 | 第22-23页 |
4.2 技术路线 | 第23页 |
5 参考文献 | 第23-32页 |
第二章 中国野生大豆中大豆花叶病毒的鉴定及演化分析 | 第32-50页 |
引言 | 第32-33页 |
1 材料与方法 | 第33-40页 |
1.1 主要试剂和仪器 | 第33-34页 |
1.1.1 主要试剂 | 第33页 |
1.1.2 主要仪器 | 第33-34页 |
1.1.3 主要溶液的配制方法 | 第34页 |
1.2 野生大豆种质的选用 | 第34-35页 |
1.3 实验方法 | 第35-40页 |
1.3.1 病样的采集与保存 | 第35页 |
1.3.2 试剂盒法植物总RNA的提取 | 第35-36页 |
1.3.3 兼并引物RT-PCR鉴定野生大豆中病毒种类 | 第36-38页 |
1.3.3.1 兼并引物的设计及合成 | 第36页 |
1.3.3.2 RT-PCR | 第36-38页 |
1.3.3.3 PCR产物检测 | 第38页 |
1.3.3.4 测序结果比对及病毒种类的鉴定 | 第38页 |
1.3.4 全基因组序列测定及演化分析 | 第38-40页 |
1.3.4.1 引物合成 | 第38-39页 |
1.3.4.2 全基因组扩增 | 第39页 |
1.3.4.3 SMV分离物序列分析 | 第39页 |
1.3.4.4 SMV系统演化树的构建 | 第39-40页 |
2 结果 | 第40-45页 |
2.1 野生大豆花叶症状观察 | 第40页 |
2.2 野生大豆花叶症状比率 | 第40-41页 |
2.3 兼并引物RT-PCR鉴定结果 | 第41-42页 |
2.4 野生大豆中SMV分离物的核酸片段序列分析 | 第42-43页 |
2.5 野生大豆中SMV分离物的全基因组测序 | 第43页 |
2.6 野生大豆中SMV分离物全基因组序列分析 | 第43-44页 |
2.7 野生大豆中SMV分离物系统进化分析 | 第44-45页 |
3 讨论 | 第45-46页 |
4 小结 | 第46-47页 |
5 参考文献 | 第47-50页 |
第三章 中国野生大豆对大豆花叶病毒的抗源筛选 | 第50-58页 |
引言 | 第50-51页 |
1 材料和方法 | 第51-52页 |
1.1 主要试剂和仪器 | 第51页 |
1.1.1 主要仪器 | 第51页 |
1.1.2 主要试剂 | 第51页 |
1.1.3 主要溶液的配制方法 | 第51页 |
1.2 野生大豆种质的选用 | 第51页 |
1.3 病毒株系 | 第51-52页 |
1.4 实验方法 | 第52页 |
1.4.1 摩擦接种 | 第52页 |
2 结果 | 第52-54页 |
2.1 南方野生大豆资源对HLJBADS001和SC7-N的抗性 | 第52-53页 |
2.2 北方野生大豆资源对HLJBADS001和SC7-N的抗性 | 第53-54页 |
3 讨论 | 第54-55页 |
4 小结 | 第55页 |
5 展望 | 第55页 |
6 参考文献 | 第55-58页 |
全文总结 | 第58-60页 |
致谢 | 第60-62页 |
攻读硕士期间已发表的论文 | 第62-64页 |
附录 | 第64-72页 |