| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 引言 | 第7-8页 |
| 文献综述 | 第8-20页 |
| 1 分子伴侣 | 第8页 |
| 2 热激蛋白 | 第8-9页 |
| 3 J-蛋白 | 第9-15页 |
| 3.1 J-蛋白概述 | 第9-10页 |
| 3.2 J-蛋白的生理功能 | 第10-14页 |
| 3.2.1 保护性作用 | 第10-11页 |
| 3.2.2 J-蛋白作为辅分子伴侣与HSP70 组成分子伴侣机器 | 第11-12页 |
| 3.2.3 J-蛋白参与信号转导过程 | 第12-13页 |
| 3.2.4 J-蛋白对环境刺激的反应及其他作用 | 第13-14页 |
| 3.3 拟南芥中J-蛋白研究 | 第14-15页 |
| 4 葡糖苷酸酶（GUS） | 第15-18页 |
| 4.1 葡糖苷酸酶（Gus）的简述 | 第15-17页 |
| 4.2 葡糖苷酸酶（Gus）在植物分子生物学中的应用 | 第17-18页 |
| 5 绿色荧光蛋白 | 第18-20页 |
| 5.1 绿色荧光蛋白及其发光特性 | 第18-19页 |
| 5.2 GFP 作为报告基因在分子生物学研究中的应用 | 第19-20页 |
| 材料和方法 | 第20-27页 |
| 1 实验材料 | 第20页 |
| 2 实验试剂和设备 | 第20页 |
| 3 实验方法 | 第20-27页 |
| 3.1 拟南芥的种植 | 第20-21页 |
| 3.2 植物基因组DNA 小量提取 | 第21页 |
| 3.3 RNA 的提取 | 第21-22页 |
| 3.4 质粒DNA 的小量提取（碱裂解法） | 第22页 |
| 3.5 PCR 扩增目的片断 | 第22-23页 |
| 3.6 目的片段的亚克隆及鉴定 | 第23页 |
| 3.7 DNA 酶切 | 第23页 |
| 3.8 DNA 片段的回收 | 第23页 |
| 3.9 DNA 片段的连接 | 第23-24页 |
| 3.10 DNA 琼脂糖电泳 | 第24页 |
| 3.11 CaCl_2 法细菌感受态细胞的制备 | 第24页 |
| 3.12 细菌转化 | 第24-25页 |
| 3.13 农杆菌感受态细胞的制备 | 第25页 |
| 3.14 农杆菌的转化及鉴定 | 第25页 |
| 3.15 拟南芥的遗传转化及筛选 | 第25-26页 |
| 3.16 GUS 染色 | 第26-27页 |
| 结果与分析 | 第27-38页 |
| 1 ATJ70 基因组织特异性表达 | 第27-32页 |
| 1.1 AtJ70 基因启动子的获得 | 第27-28页 |
| 1.2 pCAMBIA1300 AtJ70 promoter : GUS 双元载体的构建 | 第28-29页 |
| 1.3 拟南芥遗传转化及转基因植株DNA 水平的鉴定 | 第29-31页 |
| 1.4 AtJ70 基因的时空表达 | 第31-32页 |
| 1.4.1 AtJ70 基因在不同器官的表达情况 | 第31页 |
| 1.4.2 AtJ70 基因在不同发育时期的表达 | 第31-32页 |
| 2 ATJ70 基因的亚细胞定位 | 第32-38页 |
| 2.1 AtJ70 基因的获得 | 第32-34页 |
| 2.2 pBIN AtJ70-mGFP4 的构建 | 第34-35页 |
| 2.3 拟南芥遗传转化及转基因植株DNA 水平的鉴定 | 第35-36页 |
| 2.4 AtJ70 的亚细胞定位 | 第36-38页 |
| 讨论 | 第38-40页 |
| 1 组织特异性表达研究 | 第38页 |
| 2 亚细胞定位的研究 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 缩写表 | 第46-47页 |
| 附录 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
