| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-23页 |
| 第1章 综述 | 第23-45页 |
| 1 水产品中主要药物残留的种类 | 第23-27页 |
| ·抗微生物药物 | 第23-26页 |
| ·杀虫驱虫类药物 | 第26页 |
| ·调节水生动物代谢或生长类药物 | 第26-27页 |
| 2 水产品中药物残留检测的前处理技术 | 第27-33页 |
| ·液液萃取法 | 第28页 |
| ·固相萃取法 | 第28-29页 |
| ·基质固相分散法 | 第29-31页 |
| ·碳纳米管萃取法 | 第31-32页 |
| ·分子印迹法 | 第32-33页 |
| 3 水产品中药物残留的检测方法 | 第33-42页 |
| ·气相色谱法 | 第33-35页 |
| ·气相色谱-质谱法 | 第35-36页 |
| ·高效液相色谱法 | 第36-39页 |
| ·高效液相色谱-串联质谱法 | 第39-41页 |
| ·免疫分析法 | 第41-42页 |
| 4 研究意义 | 第42-43页 |
| 5 研究的内容 | 第43-44页 |
| 6 研究的创新点 | 第44-45页 |
| 第2章 水产品中喹乙醇标示残留物的定量分析方法研究 | 第45-75页 |
| 1 引言 | 第45-46页 |
| 2 喹乙醇标示残留物的氢氧化钠水解HPLC定量分析方法 | 第46-54页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·主要仪器设备 | 第46-47页 |
| ·试剂和耗材 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·溶液配制 | 第47页 |
| ·氢氧化钠水解-MAX固相萃取前处理 | 第47-48页 |
| ·HPLC色谱条件 | 第48页 |
| ·结果计算 | 第48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-54页 |
| ·氢氧化钠水解前处理方法 | 第48-49页 |
| ·HPLC色谱条件选择 | 第49-52页 |
| ·回收率和精密度 | 第52-53页 |
| ·方法线性范围和检测限 | 第53-54页 |
| 3 喹乙醇标示残留物的盐酸水解UPLC-MS/MS分析方法 | 第54-69页 |
| ·实验材料 | 第55页 |
| ·主要仪器设备 | 第55页 |
| ·试剂和耗材 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-58页 |
| ·试剂配制 | 第55-56页 |
| ·质谱结构解析 | 第56页 |
| ·盐酸水解-MAX固相萃取前处理 | 第56-57页 |
| ·UPLC色谱条件 | 第57页 |
| ·质谱条件 | 第57-58页 |
| ·结果计算 | 第58页 |
| ·结果与讨论 | 第58-69页 |
| ·质谱结构分析 | 第58-59页 |
| ·盐酸水解前处理优化 | 第59-62页 |
| ·UPLC色谱条件优化 | 第62-64页 |
| ·同位素内标的使用 | 第64-65页 |
| ·质谱条件优化 | 第65-66页 |
| ·回收率和精密度 | 第66-67页 |
| ·线性范围和检测限 | 第67-69页 |
| 4 方法比较 | 第69-72页 |
| ·喹乙醇标示残留物的HPLC分析方法比较 | 第69-70页 |
| ·喹乙醇标示残留物的HPLC-MS/MS分析方法比较 | 第70-71页 |
| ·盐酸水解UPLC-MS/MS方法与氢氧化钠水解HPLC方法比较 | 第71-72页 |
| 5 实际样品测定 | 第72-73页 |
| 6 本章小结 | 第73-75页 |
| 第3章 水产品中阿苯达唑及其代谢物多残留的分析方法研究 | 第75-117页 |
| 1 引言 | 第75-77页 |
| 2 实验材料 | 第77页 |
| ·主要仪器设备 | 第77页 |
| ·试剂和耗材 | 第77页 |
| 3 实验方法 | 第77-82页 |
| ·溶液配制 | 第77-78页 |
| ·质谱结构解析 | 第78页 |
| ·前处理方法 | 第78-80页 |
| ·乙酸乙酯快速提取前处理方法 | 第78-79页 |
| ·PS-DVB固相萃取前处理方法 | 第79页 |
| ·碳纳米管萃取前处理方法 | 第79-80页 |
| ·UPLC色谱条件 | 第80页 |
| ·质谱条件 | 第80页 |
| ·结果计算 | 第80-81页 |
| ·回收率及精密度测定 | 第81-82页 |
| ·检测限测定 | 第82页 |
| 4 结果与讨论 | 第82-113页 |
| ·质谱结构解析 | 第82-86页 |
| ·乙酸乙酯快速提取条件的选择 | 第86-87页 |
| ·固相萃取的条件和选择 | 第87-90页 |
| ·固相萃取柱的选择 | 第87-88页 |
| ·淋洗条件的选择 | 第88-89页 |
| ·洗脱条件的选择 | 第89-90页 |
| ·碳纳米管固相萃取的性质和选择 | 第90-93页 |
| ·吸附填料的选择 | 第90-91页 |
| ·洗脱溶剂及洗脱条件的选择 | 第91-92页 |
| ·阿苯达唑及其代谢物的洗脱曲线 | 第92-93页 |
| ·仪器条件的选择 | 第93-97页 |
| ·UPLC色谱条件的选择 | 第93-96页 |
| ·质谱条件的选择 | 第96-97页 |
| ·方法学验证 | 第97-109页 |
| ·乙酸乙酯快速-UPLC-MS/MS多残留分析方法 | 第98-101页 |
| ·PS-DVB SPE-UPLC-MS/MS多残留分析方法 | 第101-105页 |
| ·碳纳米管萃取-UPLC-MS/MS多残留分析方法 | 第105-109页 |
| ·方法比较 | 第109-113页 |
| ·多同位素内标稀释定量技术的比较 | 第109-111页 |
| ·乙酸乙酯快速提取法、固相萃取法和碳纳米管萃取法的比较 | 第111-113页 |
| 5 实际样品分析 | 第113-115页 |
| 6 本章小结 | 第115-117页 |
| 第4章 水产品中磺胺类药物多残留的分析方法研究 | 第117-157页 |
| 1 引言 | 第117-118页 |
| 2 磺胺类药物多残留的HPLC-在线柱后衍生荧光检测法 | 第118-132页 |
| ·实验材料 | 第119页 |
| ·主要仪器设备 | 第119页 |
| ·试剂和耗材 | 第119页 |
| ·实验方法 | 第119-121页 |
| ·溶液配制 | 第120页 |
| ·基质固相分散前处理方法 | 第120-121页 |
| ·HPLC色谱条件 | 第121页 |
| ·结果计算 | 第121页 |
| ·结果与讨论 | 第121-132页 |
| ·基质固相分散前处理 | 第121-124页 |
| ·在线柱后衍生荧光检测方法 | 第124-125页 |
| ·HPLC色谱条件选择和优化 | 第125-128页 |
| ·回收率和精密度 | 第128-131页 |
| ·方法线性范围和检测限 | 第131-132页 |
| 3 磺胺类药物多残留的碳纳米管萃取-UPLC-MS/MS分析方法 | 第132-153页 |
| ·实验材料 | 第133-134页 |
| ·主要仪器设备 | 第133页 |
| ·试剂和耗材 | 第133-134页 |
| ·实验方法 | 第134-137页 |
| ·标准溶液配制 | 第134页 |
| ·碳纳米填料SPE柱制备 | 第134-135页 |
| ·样品前处理 | 第135页 |
| ·基质溶液制备 | 第135页 |
| ·UPLC色谱条件 | 第135页 |
| ·质谱条件 | 第135-137页 |
| ·结果与讨论 | 第137-153页 |
| ·提取溶剂的选择 | 第137页 |
| ·碳纳米管萃取方法建立与优化 | 第137-141页 |
| ·UPLC色谱条件的优化与选择 | 第141-142页 |
| ·质谱条件的选择 | 第142-148页 |
| ·方法回收率及精密度 | 第148-151页 |
| ·线性范围和检测限 | 第151-153页 |
| 4 方法比较研究 | 第153-154页 |
| ·MSPD-HPLC在线柱后衍生荧光检测法与其他方法的比较 | 第153页 |
| ·碳纳米管萃取-UPLC-MS/MS方法与其他方法的比较 | 第153-154页 |
| 5 实际样品检测 | 第154-155页 |
| 6 本章小结 | 第155-157页 |
| 结论和展望 | 第157-161页 |
| 1 结论 | 第157-160页 |
| 2 展望 | 第160-161页 |
| 参考文献 | 第161-175页 |
| 附录1 英文缩略语表 | 第175-177页 |
| 附录2 博士期间的科研成果 | 第177-179页 |
| 致谢 | 第179-180页 |
