摘要 | 第3-5页 |
abstract | 第5-6页 |
中英文缩略表 | 第9-10页 |
第1章 引言 | 第10-13页 |
第2章 材料与方法 | 第13-26页 |
2.1 实验材料 | 第13-15页 |
2.1.1 实验仪器 | 第13页 |
2.1.2 实验试剂 | 第13-15页 |
2.2 主要试剂的配制 | 第15-17页 |
2.2.1 10%胎牛血清1640细胞培养液(100ml) | 第15页 |
2.2.2 脂多糖溶液的配制 | 第15页 |
2.2.3 ERK通路抑制剂PD98059溶解的配制 | 第15-16页 |
2.2.4 PI3K通路抑制剂LY294002溶液的配制 | 第16页 |
2.2.5 Western Blot相关试剂配制 | 第16-17页 |
2.2.6 PCR引物的配制 | 第17页 |
2.3 实验方法 | 第17-25页 |
2.3.1 A549细胞的培养 | 第17-19页 |
2.3.2 A549细胞的分组及处理 | 第19-20页 |
2.3.3 免疫印迹法检测TLR-4、PD-L1、P-ERK、P-AKT蛋白水平 | 第20-22页 |
2.3.4 RT-PCR检测PD-L1mRNA表达水平 | 第22-25页 |
2.4 统计学方法 | 第25-26页 |
第3章 结果 | 第26-31页 |
3.1 LPS刺激A549细胞TLR-4、PD-L1蛋白表达水平 | 第26-27页 |
3.2 LPS激活A549细胞ERK、PI3K/AKT通路。 | 第27页 |
3.3 ERK、PI3K通路抑制剂可以废除LPS对ERK、PI3K/AKT通路的激活 | 第27-28页 |
3.4 ERK、PI3K通路抑制剂可以废除LPS上调PD-L1蛋白的作用 | 第28-29页 |
3.5 ERK、PI3K通路抑制剂对LPS上调PD-L1mRNA | 第29-31页 |
第4章 讨论 | 第31-34页 |
第5章 结论与展望 | 第34-35页 |
5.1 结论 | 第34页 |
5.2 展望 | 第34-35页 |
致谢 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-40页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
综述 | 第41-49页 |
参考文献 | 第46-49页 |