| 目录 | 第4-7页 |
| 缩略词表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 水稻激素检测方法建立及水稻抗病过程中激素变化 | 第13-79页 |
| 1 文献综述 | 第13-32页 |
| 1.1 植物的防御系统 | 第13-30页 |
| 1.1.1 植物先天免疫 | 第14-22页 |
| 1.1.2 系统获得性抗性及植物激素在抗病信号传导中的作用 | 第22-30页 |
| 1.2.2.1 水杨酸信号途径 | 第23-24页 |
| 1.2.2.2 生长素信号途径 | 第24-25页 |
| 1.2.2.3 茉莉酸信号途径 | 第25-26页 |
| 1.2.2.4 脱落酸信号途径 | 第26-27页 |
| 1.2.2.5 乙烯信号途径 | 第27-29页 |
| 1.2.2.6 赤霉素信号途径 | 第29页 |
| 1.2.2.7 细胞分裂素信号途径 | 第29-30页 |
| 1.2 分析植物激素的方法 | 第30-32页 |
| 1.2.1 植物激素的提取 | 第30-31页 |
| 1.2.2 植物激素的检测 | 第31-32页 |
| 2 研究目的和意义 | 第32-33页 |
| 3 材料与方法 | 第33-38页 |
| 3.1 水稻材料 | 第33页 |
| 3.2 白叶枯病接种与调查 | 第33页 |
| 3.3 核酸操作 | 第33-34页 |
| 3.3.1 水稻RNA抽提及反转录 | 第33-34页 |
| 3.3.2 Realtime PCR基因表达分析 | 第34页 |
| 3.4 水稻内源激素和植物抗毒素的抽提 | 第34-37页 |
| 3.4.1 粗提液过滤 | 第34-37页 |
| 3.4.2 C18柱固相萃取方法 | 第37页 |
| 3.4.3 混合模式固相萃取方法 | 第37页 |
| 3.5 水稻内源激素和植物抗毒素的检测 | 第37-38页 |
| 4 结果与分析 | 第38-71页 |
| 4.1 建立HPLC-MSMS快速检测水稻激素方法 | 第38-59页 |
| 4.1.1 质谱条件优化 | 第38-47页 |
| 4.1.2 液相条件优化 | 第47-48页 |
| 4.1.3 不同抽提方法的比较 | 第48-49页 |
| 4.1.4 各种激素的定量限 | 第49-50页 |
| 4.1.5 水稻激素与代谢产物的回收效率 | 第50-53页 |
| 4.1.6 病源菌侵染后水稻中激素含量变化 | 第53-59页 |
| 4.1.6.1 脱落酸在水稻抗病过程中的变化 | 第53-54页 |
| 4.1.6.2 生长素在水稻抗病过程中的变化 | 第54-56页 |
| 4.1.6.3 水杨酸,茉莉酸及茉莉酸的衍生物在水稻抗病过程中的变化 | 第56-59页 |
| 4.1.6.4 植保素在水稻抗病过程中的变化 | 第59页 |
| 4.2 建立基于固相萃取的HPLC/MS MS检测植物激素方法 | 第59-71页 |
| 4.2.1 质谱条件优化 | 第60页 |
| 4.2.2 液相条件的优化 | 第60-62页 |
| 4.2.3 固相萃取条件的优化 | 第62-63页 |
| 4.2.4 萃取效率 | 第63页 |
| 4.2.5 水稻在病源菌侵染后激素变化 | 第63-71页 |
| 5 讨论 | 第71-79页 |
| 5.1 植物激素的定量检测 | 第71-73页 |
| 5.2 植物激素在水稻抗病过程中的作用 | 第73-78页 |
| 5.3 激素微量检测的意义 | 第78-79页 |
| 第二章 水稻抗病相关突变体筛选及基因克隆 | 第79-103页 |
| 1 文献综述 | 第79-82页 |
| 1.1 利用突变体克隆植物抗病相关基因的策略 | 第79-80页 |
| 1.1.1 农杆菌介导的T-DNA标签 | 第79页 |
| 1.1.2 转座子标签 | 第79-80页 |
| 1.2 T-DNA插入突变体侧翼序列的分离 | 第80-82页 |
| 1.2.1 热不对称PCR(TAIL-PCR) | 第80-81页 |
| 1.2.2 反向PCR | 第81页 |
| 1.2.3 接头PCR | 第81-82页 |
| 1.2.4 质粒拯救 | 第82页 |
| 2 研究目的和意义 | 第82-83页 |
| 3 材料与方法 | 第83-88页 |
| 3.1 试验材料 | 第83页 |
| 3.1.1 水稻材料与来源 | 第83页 |
| 3.1.2 菌株 | 第83页 |
| 3.2 试验方法 | 第83-88页 |
| 3.2.1 水稻DNA抽提 | 第83页 |
| 3.2.2 T-DNA插入突变体植株侧翼序列分离 | 第83-85页 |
| 3.2.3 突变家系的基因型检测 | 第85页 |
| 3.2.4 遗传转化载体的构建 | 第85页 |
| 3.2.5 农杆菌介导的遗传转化 | 第85-88页 |
| 4 结果与分析 | 第88-98页 |
| 4.1 田间筛选抗病相关突变体 | 第88-91页 |
| 4.2 突变体侧翼序列的分离和突变体与T-DNA插入的共分离分析 | 第91-92页 |
| 4.3 水稻OsFBL基因家族分析 | 第92-94页 |
| 4.4 OsFBL52的基因结构 | 第94页 |
| 4.5 OsFBL52表达量与感病表型共分离 | 第94-95页 |
| 4.6 OsFBL52在不同水稻品种中受病原菌诱导表达模式分析 | 第95-96页 |
| 4.7 OsFBL52突变后增强水稻的感病性 | 第96-97页 |
| 4.8 抑制OsFBL52改变水稻形态 | 第97-98页 |
| 5 讨论 | 第98-103页 |
| 5.1 水稻突变体库在水稻抗病研究中有重要意义 | 第98-100页 |
| 5.2 水稻OsFBL基因家族 | 第100页 |
| 5.3 OsFBL52在水稻抗病中的作用 | 第100-103页 |
| 参考文献 | 第103-130页 |
| 附录1：个人简介 | 第130页 |
| 附录2：发表论文和会议摘要 | 第130-132页 |
| 致谢 | 第132页 |
