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Lactobacillus rhamnosus GG来源蛋白上调肠道IgA产生的机制研究

中文摘要第4-7页
Abstract第7-8页
缩略语/符号说明第12-14页
前言第14-17页
    研究现状、成果第14-15页
    研究目的、方法第15-17页
一、p40通过刺激肠道上皮细胞分泌April促进IgA产生第17-46页
    1.1 对象和方法第17-30页
        1.1.1 实验材料第17-18页
        1.1.2 小鼠肠道上皮细胞培养第18-20页
        1.1.3 动物饲养第20页
        1.1.4 LGG细菌培养以及P40蛋白提取第20-21页
        1.1.5 小鼠脾脏提取B淋巴细胞第21-22页
        1.1.6 流式细胞技术检测IgA+B细胞第22页
        1.1.7 ELISA法检测IgA和April第22-24页
        1.1.8 Real-Time PCR第24-26页
        1.1.9 Western blot第26-30页
        1.1.10 统计学方法第30页
    1.2 结果第30-34页
        1.2.1 LGG来源的p40可通过小肠上皮细胞分泌因子促进Ig A产生第30-32页
        1.2.2 p40可在体外促进肠道上皮细胞分泌April第32-34页
    1.3 讨论第34-45页
        1.3.1 益生菌LGG及其衍生蛋白第34-36页
        1.3.2 IgA的介绍第36-37页
        1.3.3 B细胞IgA类别转换的机制第37-42页
        1.3.4 IgA在肠道免疫中的作用第42-45页
    1.4 小结第45-46页
二、EGFR在p40刺激肠道上皮细胞分泌April中的作用第46-68页
    2.1 对象和方法第46-53页
        2.1.1 Egfr~(fl/fl)Vil-Cre小鼠培育第46-47页
        2.1.2 Egfr~(fl/fl)Vil-Cre小鼠基因分型鉴定第47-50页
        2.1.3 小鼠肠道enteroids的培养第50-51页
        2.1.4 MSIE细胞的核蛋白提取第51-52页
        2.1.5 小鼠肠道enteroids RNA提取第52-53页
        2.1.6 统计学方法第53页
    2.2 结果第53-58页
        2.2.1 p40刺激MSIE细胞分泌April需要EGFR表达第53-55页
        2.2.2 p40通过EGFR/Akt/NF-kB刺激MSIE细胞促进April表达第55-56页
        2.2.3 Egfr~(fl/fl) Vil-cre和Egfr~(fl/fl)小鼠enteroids体外培养生长以及April的表达第56-58页
    2.3 讨论第58-66页
        2.3.1 p40激活EGFR的机制第58-64页
        2.3.2 肠道组织enteroids培养技术第64-66页
    2.4 小结第66-68页
三、p40通过肠道上皮细胞促进IgA产生的体内研究第68-84页
    3.1 对象和方法第68-71页
        3.1.1 p40 beads的制备第68页
        3.1.2 小鼠小肠组织提取肠道上皮细胞第68-69页
        3.1.3 小鼠肠道固有层淋巴细胞的提取第69-70页
        3.1.4 小鼠小肠组织IgA免疫荧光染色第70-71页
        3.1.5 统计学方法第71页
    3.2 结果第71-80页
        3.2.1 p40可促进wt小鼠肠道上皮细胞April表达和肠道IgA分泌第71-74页
        3.2.2 敲除EGFR后小鼠肠道上皮细胞April表达降低,肠道IgA分泌减少第74-80页
    3.3 讨论第80-82页
        3.3.1 IgA在人类和小鼠表达以及作用的不同第80页
        3.3.2 IgA在肠道炎症以及肠道炎症相关性肿瘤中的作用第80-82页
    3.4 小结第82-84页
全文结论第84-85页
论文创新点第85-86页
参考文献第86-103页
发表论文和参加科研情况说明第103-105页
综述 IgA在胃肠道中的作用和以及调节机制第105-122页
    综述参考文献第115-122页
致谢第122-123页
个人简历第123页

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