中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
前言 | 第14-17页 |
研究现状、成果 | 第14-15页 |
研究目的、方法 | 第15-17页 |
一、p40通过刺激肠道上皮细胞分泌April促进IgA产生 | 第17-46页 |
1.1 对象和方法 | 第17-30页 |
1.1.1 实验材料 | 第17-18页 |
1.1.2 小鼠肠道上皮细胞培养 | 第18-20页 |
1.1.3 动物饲养 | 第20页 |
1.1.4 LGG细菌培养以及P40蛋白提取 | 第20-21页 |
1.1.5 小鼠脾脏提取B淋巴细胞 | 第21-22页 |
1.1.6 流式细胞技术检测IgA+B细胞 | 第22页 |
1.1.7 ELISA法检测IgA和April | 第22-24页 |
1.1.8 Real-Time PCR | 第24-26页 |
1.1.9 Western blot | 第26-30页 |
1.1.10 统计学方法 | 第30页 |
1.2 结果 | 第30-34页 |
1.2.1 LGG来源的p40可通过小肠上皮细胞分泌因子促进Ig A产生 | 第30-32页 |
1.2.2 p40可在体外促进肠道上皮细胞分泌April | 第32-34页 |
1.3 讨论 | 第34-45页 |
1.3.1 益生菌LGG及其衍生蛋白 | 第34-36页 |
1.3.2 IgA的介绍 | 第36-37页 |
1.3.3 B细胞IgA类别转换的机制 | 第37-42页 |
1.3.4 IgA在肠道免疫中的作用 | 第42-45页 |
1.4 小结 | 第45-46页 |
二、EGFR在p40刺激肠道上皮细胞分泌April中的作用 | 第46-68页 |
2.1 对象和方法 | 第46-53页 |
2.1.1 Egfr~(fl/fl)Vil-Cre小鼠培育 | 第46-47页 |
2.1.2 Egfr~(fl/fl)Vil-Cre小鼠基因分型鉴定 | 第47-50页 |
2.1.3 小鼠肠道enteroids的培养 | 第50-51页 |
2.1.4 MSIE细胞的核蛋白提取 | 第51-52页 |
2.1.5 小鼠肠道enteroids RNA提取 | 第52-53页 |
2.1.6 统计学方法 | 第53页 |
2.2 结果 | 第53-58页 |
2.2.1 p40刺激MSIE细胞分泌April需要EGFR表达 | 第53-55页 |
2.2.2 p40通过EGFR/Akt/NF-kB刺激MSIE细胞促进April表达 | 第55-56页 |
2.2.3 Egfr~(fl/fl) Vil-cre和Egfr~(fl/fl)小鼠enteroids体外培养生长以及April的表达 | 第56-58页 |
2.3 讨论 | 第58-66页 |
2.3.1 p40激活EGFR的机制 | 第58-64页 |
2.3.2 肠道组织enteroids培养技术 | 第64-66页 |
2.4 小结 | 第66-68页 |
三、p40通过肠道上皮细胞促进IgA产生的体内研究 | 第68-84页 |
3.1 对象和方法 | 第68-71页 |
3.1.1 p40 beads的制备 | 第68页 |
3.1.2 小鼠小肠组织提取肠道上皮细胞 | 第68-69页 |
3.1.3 小鼠肠道固有层淋巴细胞的提取 | 第69-70页 |
3.1.4 小鼠小肠组织IgA免疫荧光染色 | 第70-71页 |
3.1.5 统计学方法 | 第71页 |
3.2 结果 | 第71-80页 |
3.2.1 p40可促进wt小鼠肠道上皮细胞April表达和肠道IgA分泌 | 第71-74页 |
3.2.2 敲除EGFR后小鼠肠道上皮细胞April表达降低,肠道IgA分泌减少 | 第74-80页 |
3.3 讨论 | 第80-82页 |
3.3.1 IgA在人类和小鼠表达以及作用的不同 | 第80页 |
3.3.2 IgA在肠道炎症以及肠道炎症相关性肿瘤中的作用 | 第80-82页 |
3.4 小结 | 第82-84页 |
全文结论 | 第84-85页 |
论文创新点 | 第85-86页 |
参考文献 | 第86-103页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第103-105页 |
综述 IgA在胃肠道中的作用和以及调节机制 | 第105-122页 |
综述参考文献 | 第115-122页 |
致谢 | 第122-123页 |
个人简历 | 第123页 |