| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第12-15页 |
| 第一部分 CCRCC组织、癌旁组织及肾细胞癌细胞中FZD7 的表达水平的检测 | 第15-24页 |
| 1 材料 | 第15-17页 |
| 1.1 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.2 主要溶液的配制 | 第16页 |
| 1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
| 1.4 实验组织与细胞 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-19页 |
| 2.1 细胞培养 | 第17页 |
| 2.2 免疫组化检测人ccRCC组织和癌旁组织中Fzd7 的表达水平 | 第17-18页 |
| 2.3 RCC细胞中Fzd7 蛋白水平的检测 | 第18页 |
| 2.4 检测肾癌细胞中Fzd7 是否存在糖基化修饰 | 第18-19页 |
| 2.5 统计学分析 | 第19页 |
| 3 实验结果 | 第19-22页 |
| 3.1 免疫组化检测肾癌组织中Fzd7 表达水平 | 第19-21页 |
| 3.2 Western blot检测肾细胞癌细胞中Fdz7 的表达 | 第21-22页 |
| 4 讨论 | 第22-24页 |
| 第二部分 内源性WNT对FZD7 胞吞作用的调节机制研究 | 第24-37页 |
| 1 材料 | 第24-26页 |
| 1.1 主要试剂 | 第24-25页 |
| 1.2 主要溶液的配置 | 第25页 |
| 1.3 实验仪器 | 第25-26页 |
| 1.4 引物与质粒 | 第26页 |
| 2 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.1 细胞培养 | 第26-27页 |
| 2.2 反转录PCR、real-time PCR检测肾细胞癌细胞中Fzd7、Wnt分子的mRNA水平 | 第27-28页 |
| 2.3 Wnt/β-catenin信号通路与Fzd7 相关性的确定 | 第28-30页 |
| 2.4 Western blot检测氯丙嗪、制霉菌素对Fzd7 表达的影响 | 第30页 |
| 2.5 Fzd7shRNA、GFPshRNA转染 786-O细胞的构建 | 第30-31页 |
| 2.6 MTS法检测细胞增殖 | 第31-32页 |
| 2.7 统计学分析 | 第32页 |
| 3 实验结果 | 第32-35页 |
| 3.1 在肾细胞癌细胞中内源性Wnt刺激Fzd7 的胞吞作用 | 第32-33页 |
| 3.2 内源性Wnt通过clathrin介导刺激Fzd7 的胞吞作用 | 第33页 |
| 3.3 内源性Wnts激活经典信号通路 | 第33-34页 |
| 3.4 Fzd7 shRNA转染可抑制肾细胞癌细胞的增殖 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-37页 |
| 论文总结 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 综述 FZD7 作为肿瘤潜在治疗靶点的研究 | 第42-51页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第51-52页 |
| 中英文缩略词 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
