| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一部分：细粒棘球蚴的原头蚴与脾细胞体外共培养早期Th9细胞及其它Th细胞亚群及相关炎性细胞因子的变化 | 第15-33页 |
| 1 材料 | 第15-17页 |
| 1.1 主要仪器和试剂 | 第15-17页 |
| 1.2 主要病原体采集及小鼠来源 | 第17页 |
| 2 方法 | 第17-23页 |
| 2.1 原头蚴的采集，培养，活性鉴定 | 第17页 |
| 2.2 小鼠脾淋巴细胞悬液制备 | 第17-18页 |
| 2.3 体外建立原头蚴感染模型 | 第18-19页 |
| 2.4 流式染色及检测 | 第19页 |
| 2.5 ELISA法检测共培养上清液中细胞因子的含量 | 第19-20页 |
| 2.6 试剂盒法提取检测细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠脾细胞总RNA | 第20-21页 |
| 2.7 RNA逆转录合成c DNA | 第21页 |
| 2.8 引物合成 | 第21-22页 |
| 2.9 实时荧光定量PCR检测细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠脾细胞各炎症相关细胞因子受体基因的表达 | 第22-23页 |
| 2.10 统计学分析 | 第23页 |
| 3 结果 | 第23-31页 |
| 3.1 早期体外不同时间点小鼠脾细胞和原头蚴共培养，小鼠脾细胞中Th1细胞、Th2细胞、Treg细胞、Th9细胞的百分含量 | 第23-26页 |
| 3.2 早期体外不同时间点脾细胞和原头蚴共培养上清液中Th9细胞相关细胞因子蛋白水平的表达 | 第26-30页 |
| 3.3 早期体外混合培养脾细胞和原头蚴以及加入IL-9 共培养 48 h后炎症细胞因子m RNA水平的表达 | 第30-31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 第二部分：体内小鼠细粒棘球蚴原头蚴感染早期Th9细胞以及其它Th细胞亚群及相关炎性细胞因子的变化 | 第33-47页 |
| 1 材料及试剂(同第一部分） | 第33页 |
| 2 方法 | 第33-35页 |
| 2.1 原头蚴的采集、培养、活性鉴定（同第一部分） | 第33页 |
| 2.2 建立细粒棘球蚴原头蚴感染小鼠动物模型 | 第33页 |
| 2.3 外周血的采集及处理保存 | 第33页 |
| 2.4 小鼠脾单个核细胞的制备 | 第33页 |
| 2.5 流式细胞染色及检测 | 第33-34页 |
| 2.6 ELISA法检测细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠外周血中各炎症相关细胞因子含量 | 第34页 |
| 2.7 试剂盒法提取检测细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠脾细胞总RNA（同第一部分） | 第34页 |
| 2.8 RNA逆转录合成c DNA（同第一部分） | 第34页 |
| 2.9 引物合成 | 第34-35页 |
| 2.10 实时荧光定量PCR检测细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠脾细胞各炎症相关细胞因子基因的表达（同第一部分） | 第35页 |
| 2.11 统计学分析（同第一部分） | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-44页 |
| 3.1 早期细粒棘球蚴原头蚴感染小鼠后不同时间脾细胞中Th9细胞及其它Th细胞亚群的比例变化 | 第35-39页 |
| 3.2 细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠不同时间Th9细胞及其他Th亚群细胞相关的炎性细胞因子m RNA水平表达升高 | 第39-41页 |
| 3.3 细粒棘球蚴原头蚴早期感染小鼠不同时间Th9细胞及其它Th亚群细胞相关的炎性细胞因子蛋白水平表达增加 | 第41-44页 |
| 4 讨论 | 第44-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 综述 | 第51-58页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59-60页 |
| 导师评阅表 | 第60页 |
