| 中文摘要 | 第3-4页 |
| 英文摘要 | 第4-5页 |
| 1 绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 基因治疗 | 第12页 |
| 1.2 基因治疗载体 | 第12-19页 |
| 1.2.1 病毒载体 | 第12-15页 |
| 1.2.2 非病毒载体 | 第15-19页 |
| 2 聚阴离子电解质对阳离子脂质体基因运输材料的改善研究 | 第19-35页 |
| 2.1 引言 | 第19-21页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第21-23页 |
| 2.2.1 材料和试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.2 仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.3 细胞和质粒 | 第23页 |
| 2.3 方法及步骤 | 第23-27页 |
| 2.3.1 细胞培养及质粒提取 | 第23-24页 |
| 2.3.2 复合物的制备 | 第24-25页 |
| 2.3.3 Zeta电位测量 | 第25页 |
| 2.3.4 酶稳定性试验 | 第25-26页 |
| 2.3.5 溶血实验 | 第26页 |
| 2.3.6 细胞毒性实验 | 第26页 |
| 2.3.7 细胞体外转染与绿色荧光观察 | 第26-27页 |
| 2.3.8 流式细胞仪测细胞转染效率 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-33页 |
| 2.4.1 聚阴离子多糖/脂质体/p DNA复合物的性质表征 | 第27-29页 |
| 2.4.2 细胞体外转染效率研究 | 第29-31页 |
| 2.4.3 细胞体外转染毒性研究 | 第31-32页 |
| 2.4.4 材料的膜扰动功能研究 | 第32-33页 |
| 2.5 小结 | 第33-35页 |
| 3 新型无机材料辅助小分子PEI的基因运输研究 | 第35-49页 |
| 3.1 引言 | 第35-36页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第36-38页 |
| 3.2.1 材料和试剂 | 第36-37页 |
| 3.2.2 仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.3 细胞和质粒 | 第38页 |
| 3.3 方法及步骤 | 第38-42页 |
| 3.3.1 细胞培养及质粒提取 | 第38-39页 |
| 3.3.2 不同形貌氧化锌（Zn O）的合成 | 第39-40页 |
| 3.3.3 Zn O/PEI/p DNA复合物的制备 | 第40页 |
| 3.3.4 琼脂糖凝胶阻滞分析实验 | 第40-41页 |
| 3.3.5 酶稳定性实验 | 第41页 |
| 3.3.6 细胞毒性实验 | 第41页 |
| 3.3.7 有血清的细胞体外转染实验 | 第41页 |
| 3.3.8 细胞的内吞实验 | 第41-42页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第42-46页 |
| 3.4.1 氧化锌的表征 | 第42-43页 |
| 3.4.2 细胞体外转染效率研究 | 第43-45页 |
| 3.4.3 细胞体外转染毒性研究 | 第45页 |
| 3.4.4 细胞的内吞过程研究 | 第45-46页 |
| 3.5 小结 | 第46-49页 |
| 4 一种新型自组装材料的合成及其对m RNA的运输研究 | 第49-63页 |
| 4.1 引言 | 第49-51页 |
| 4.2 试剂与仪器 | 第51-53页 |
| 4.2.1 试剂 | 第51-52页 |
| 4.2.2 仪器 | 第52-53页 |
| 4.3 材料的合成与表征 | 第53-60页 |
| 4.4 材料的性质测定 | 第60-62页 |
| 4.4.1 材料M的酸降解实验 | 第60-61页 |
| 4.4.2 材料M与锌离子螯合后的凝胶阻滞实验 | 第61-62页 |
| 4.4.3 锌离子的细胞毒性实验 | 第62页 |
| 4.5 小结 | 第62-63页 |
| 5 总结与展望 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 附录 | 第77-91页 |
| A．主要合成化合物的1~H-NMR以及(13)~C-NMR谱图 | 第77-91页 |
| B．在读期间发表的学术论文 | 第91页 |
