中文摘要 | 第9-14页 |
英文摘要 | 第14-19页 |
前言 | 第20-23页 |
第一部分 NUPR1在胶质母细胞瘤中的表达与临床病理特性的关系 | 第23-43页 |
引言 | 第23-24页 |
材料和方法 | 第24-35页 |
1. 材料 | 第24-28页 |
1.1 药品与试剂 | 第24-25页 |
1.2 仪器 | 第25-26页 |
1.3 临床病例组织 | 第26页 |
1.4 主要溶液的配制 | 第26-28页 |
2.实验方法 | 第28-35页 |
2.1 QRT-PCR实验 | 第28-31页 |
2.2 Western Blot实验 | 第31-32页 |
2.3 病理免疫组化 | 第32-34页 |
2.4 细胞培养 | 第34-35页 |
2.5 数据统计 | 第35页 |
结果 | 第35-41页 |
1. NUPR1基因在肿瘤组织中的表达升高 | 第35-37页 |
2. NUPR1基因的表达与胶质瘤的恶性程度相关 | 第37-38页 |
3.NUPR1基因的表达与胶质瘤患者的预后相关 | 第38-40页 |
4. NUPR1基因在胶质瘤细胞系U251、U87、U373和A172中的表达情况 | 第40-41页 |
讨论 | 第41-42页 |
结论 | 第42-43页 |
第二部分 NUPR1在胶质母细胞瘤中的生物学功能(体外和体内) | 第43-63页 |
引言 | 第43页 |
材料和方法 | 第43-52页 |
1. 材料 | 第43-45页 |
1.1 药品与试剂 | 第43-44页 |
1.2 仪器 | 第44-45页 |
1.3 细胞系、动物 | 第45页 |
1.4 主要溶液的配制 | 第45页 |
2.实验方法 | 第45-52页 |
2.1 质粒病毒构建 | 第45-48页 |
2.2 慢病毒感染细胞实验 | 第48页 |
2.3 细胞MTT实验 | 第48页 |
2.4 细胞计数实验 | 第48-49页 |
2.5 细胞BrdU实验 | 第49页 |
2.6 细胞划痕实验 | 第49-50页 |
2.7 细胞周期实验 | 第50页 |
2.8 细胞凋亡实验 | 第50页 |
2.9 细胞的培养 | 第50页 |
2.10 裸鼠成瘤实验 | 第50-51页 |
2.11 细胞Western Blot实验 | 第51页 |
2.12 细胞RT-PCR实验 | 第51-52页 |
2.13 数据处理 | 第52页 |
结果 | 第52-59页 |
1. U251、U87稳转细胞系的构建 | 第52-53页 |
2. NUPR1基因对胶质母细胞瘤细胞迁移的影响 | 第53-54页 |
3. NUPR1基因对胶质母细胞瘤细胞增殖的影响 | 第54-56页 |
4. NUPR1基因对胶质母细胞瘤细胞周期的影响 | 第56-57页 |
5. NUPR1基因对胶质母细胞瘤细胞凋亡的影响 | 第57-58页 |
6. NUPR1基因对裸鼠种植瘤增殖的影响 | 第58-59页 |
讨论 | 第59-62页 |
结论 | 第62-63页 |
第三部分 NUPR1在胶质母细胞瘤中促进细胞增殖的分子学机制 | 第63-75页 |
引言 | 第63页 |
材料和方法 | 第63-68页 |
1. 材料 | 第63-65页 |
1.1 药品与试剂 | 第63-64页 |
1.2 仪器 | 第64页 |
1.3 细胞系及组织标本 | 第64-65页 |
1.4 主要溶液的配制 | 第65页 |
2.实验方法 | 第65-68页 |
2.1 细胞的培养 | 第65页 |
2.2 细胞和组织Western Blot实验 | 第65页 |
2.3 Path Scan? Antibody Array Kit法 | 第65-66页 |
2.4 组织免疫双标法实验 | 第66-67页 |
2.5 免疫组化实验过程 | 第67-68页 |
2.6 数据处理 | 第68页 |
结果 | 第68-72页 |
1. NUPR1介导P27影响胶质母细胞瘤细胞周期 | 第68-70页 |
2. NUPR1介导ERK、P38MAPK信号通路影响胶质母细胞瘤细胞增殖 | 第70-72页 |
讨论 | 第72-74页 |
结论 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-82页 |
综述 | 第82-96页 |
参考文献 | 第91-96页 |
攻读学位期间发表文章情况 | 第96-97页 |
缩略词表 | 第97-99页 |
致谢 | 第99-100页 |